在医学教学、科研和医学工作中，不论是从事基础医学的还是临床医学、预防医学，都需要用实验动物来进行各种实验。通过对动物的实 验的观察和分析，来研究和解决医学上存在的许多问题，动物实验方法已成为医学科学研究和救学工作中必不可少的重要手段。动物实验方法 是多种多样的，在医学的各个领域内都有其不同的应用，其中一些基本方法都是共同性的，如动物的选择、抓取、固定、麻醉、脱毛、给药。 采血、采尿。急数，处死、尸检等，不管是从事何种课题的医学研究都要用这套基本方法，因此，动物实验基本方法，已成为医学科技工作者 必须掌据的一 项基本功 动物实验按机体水平不同的可分为整体实验和离体实验两种，还可进一步具体地分为亚细胞、细胞、组织。器官，整体动物和无损伤动物 等水平的实验。按动物实验的时问长短可分为急性实验(2天以内)，亚急性实验(1“4周)和慢性实验(2~6个月或更长时问甚至整个生武 期) 动物实验的方法很多，如有生理学的动物实验方法：病理生理学的动物实验方法：药理学的动物实验方法：病理解制学、组织学的动物实 验方法：微生物学和免疫学的动物实验方法等等。下面举一些动物实验的常用方法： 1.复制动物模型法此法是动物实验最基本的方法。是采用人工的方法使动物在一定致病因素（机械、化学、生物和物理）作用下，造成动 物的组织，器官或全身的一定损伤，复制成与人类疾病相似的动物疾病模型，来研究各种疾病的发生、发展规律及防治方法。 。切开、分离法此法是以活体动物为对象的整体实验常用方法。习惯上把在麻醉情况下，制备一些实验条件（如活体解制、分商暴露器 宜、组织或进行一些手术制备等指施)进行研究者称“急性动物实验”。其优点是比较简使，操作后可以即进行观察，实验条件相对地较易控 制，对要研究的器官，有可能直接观察。但存在着麻醉、手术创造及存活时间较短等因素，也会对实验结果带来一定的影响。因此采用此法应 注意麻醉深度更适中，手术要轻巧，少出血、减少创伤，并要熟悉手术部位的神经、血管等解副。 3.切除和注入提取液法常用于研究内分论器官的生理和病理病变，如研究切除某一象体后看辐射对机体的影响，切除某一腺体后看出现什 么症状而推论这种腺体的功能：如蝌封无甲状腺素，如注入甲状象索，绑蚪很快变成了蛙。 4.离体组织器官法离体实验是利用动物的离体组织、器宜成生物性致病因子（微生物、寄生虫等），置于一定的存活条件下（如相度、营 养成分、氧气、水，pH等)进行观察的一种实验方法。如可利用离体肠管观察药物对肠管动物、吸收、通透性、血流情况等的影响，并进行作 用机理的分析；利用离体胆囊来筛选引起胆囊舒缩的药物：利用大肠杆菌或其它细菌进行药物敏感性实验。寻找抑制细菌生长的药物，并研究 其作用规律，以便为阳道感染的防治提供线索。动物组织、细胞的培养也常用此种方法。离体实验的优点是方法比较简单，一般不需要很复杂 的仪器设备。实验条件比较容易控制，牵涉的人力较少，因此常被列为分析性研究的一种手段。不足之处是模拟的存活条件毕竟与整体的实际 情况有较大的出入，其结果也往往与体内的变化有一定距离，因此可以作为整体研究的补充和参考。 5.接管法用无菌手术方法给动物造成不同的人造接管如胃肠道痿管、膀胱瘘管、唾液腺痿管、食道接管、胆囊接管等，这些瘘管可以收集 内脏液体，是生理学消化研究的主要方法。此种方法是慢性动物实验所常用的方法。侵性动物实验一般是先在无苗操作下制备好实验模型（接 管法是其中一种)，待动物恢复健康后进行研究。这类研究方法的优点在于被研究的对象，其机体内外环境已处于较自然的相对平衡状态，条 件比较稳定，所得的结果接近生理情况。但需要事先制备，术后护理，等动物恢复健康后才能从事实验，花法时间较长，工作量较大，因而在 选用上受到一定限制。除了用手术制备的动物实验外，运用药物或食饵等措施制备病理模型，如诱发各种实验性动物疾病模型的方法也可归为 慢性动物实验。 6.移植法一般是将动物的器官、组织或细胞进行相互移植的一种方法。如骨髓移植时，将小鼠A(供体)的骨髓注入到小风B的血液中 (受体)，很快可见魂结节化（牌造血）。牌结节的数量反应了造血干细跑的多少，由此可以观察干细孢的变化，各小鼠之间的骨髓移植叫同 种骨髓移植，同一品系小鼠内各小鼠之间的骨随移植叫同系骨，小鼠骨随移植给大鼠则叫异种骨髓移植，动物各种组织、器宜的移植也是实 7,生物电.活性观察法对动物体各种生物电用电生理记录仪进行观察记录，如心电、肌电、脑电等：对动物组织中各种活动物质用生物化 学法测定。如各种确。激素等】 动物各种疾东时病理组织学改变可从组织学的鱼府来探 疾病防治机理，例如通过闹尾组织节片和肉眼观察，分析口中药、针刺或局部药对有炎症民的影响，明不同证型时南民变化的病理 特点以及某些病人用中西医结合非手术治 于电子显技术的进展，不仅可以现察到病变时细胞内细胞器等亚细胞结 构的变化，而目也可以运 电子扫方法对动物器的微小结构进行完整的表层 角学双察法注入抗原使动物致敏。 血清、抗组织免疫血清笔平用、 ,如常选用新西兰或大白耳家免制备病原体免疫血清。间接免疫血清、抗补体抗体 标记免疫技术放射气 术.免疫电镜技术等对动物免夜后各 疫变化进行检直 0,其它方法如联体动物法，条件反 法生物 传法、放射生 物法 药物化学等等 动物实验的基本操作技术方法，根据实验顾序分述如下 二、实验动物的抓取固定方法 正确的抓取定动物，是为了不损害动物健康，不影响观察指标，并防止被动物咬伤，保证实验顺利进行。抓取固定动物的方法依实验内 容和动物类而定。抓取固定动物前，必须对各种动物的一般习性有所了解，抓取固定时既要小心仔细，不能粗暴，又要大担敢捷，确实达到正 确抓取固定动物的目的。 (一)小鼠抓取固定方法 小鼠温顺，一設不会咬人，抓取时先用右手抓取民尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓佳小鼠的阿 耳和颈部皮肤（见图11之一），将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可（图1之二）。人经验者直接 用左手小指钩起鼠尼，迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌周、皮下、肌肉和腹 腔注射以及其他实验操作。如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时，则需将小配作一定形式的固定，解剖手术和心脏采血等均可使动物 在医学教学、科研和医学工作中，不论是从事基础医学的还是临床医学、预防医学，都需要用实验动物来进行各种实验。通过对动物的实 验的观察和分析，来研究和解决医学上存在的许多问题，动物实验方法已成为医学科学研究和教学工作中必不可少的重要手段。动物实验方法 是多种多样的，在医学的各个领域内都有其不同的应用，其中一些基本方法都是共同性的，如动物的选择、抓取、固定、麻醉、脱毛、给药、 采血、采尿、急救、处死、尸检等，不管是从事何种课题的医学研究都要用这套基本方法，因此，动物实验基本方法，已成为医学科技工作者 必须掌握的一项基本功。 动物实验按机体水平不同的可分为整体实验和离体实验两种，还可进一步具体地分为亚细胞、细胞、组织、器官，整体动物和无损伤动物 等水平的实验。按动物实验的时间长短可分为急性实验（2天以内）、亚急性实验（1～4周）和慢性实验（2～6个月或更长时间甚至整个生命 期）。 动物实验的方法很多，如有生理学的动物实验方法；病理生理学的动物实验方法；药理学的动物实验方法；病理解剖学、组织学的动物实 验方法；微生物学和免疫学的动物实验方法等等。下面举一些动物实验的常用方法： 1．复制动物模型法此法是动物实验最基本的方法，是采用人工的方法使动物在一定致病因素（机械、化学、生物和物理）作用下，造成动 物的组织，器官或全身的一定损伤，复制成与人类疾病相似的动物疾病模型，来研究各种疾病的发生、发展规律及防治方法。 2．切开、分离法此法是以活体动物为对象的整体实验常用方法。习惯上把在麻醉情况下，制备一些实验条件（如活体解剖、分离暴露器 官、组织或进行一些手术制备等措施）进行研究者称“急性动物实验”。其优点是比较简便，操作后可以即进行观察，实验条件相对地较易控 制，对要研究的器官，有可能直接观察。但存在着麻醉、手术创造及存活时间较短等因素，也会对实验结果带来一定的影响。因此采用此法应 注意麻醉深度更适中，手术要轻巧，少出血、减少创伤，并要熟悉手术部位的神经、血管等解剖。 3．切除和注入提取液法常用于研究内分泌器官的生理和病理病变，如研究切除某一腺体后看辐射对机体的影响，切除某一腺体后看出现什 么症状而推论这种腺体的功能；如蝌蚪无甲状腺素，如注入甲状腺素，蝌蚪很快变成了蛙。 4．离体组织器官法离体实验是利用动物的离体组织、器官或生物性致病因子（微生物、寄生虫等），置于一定的存活条件下（如温度、营 养成分、氧气、水、pH等）进行观察的一种实验方法。如可利用离体肠管观察药物对肠管动物、吸收、通透性、血流情况等的影响，并进行作 用机理的分析；利用离体胆囊来筛选引起胆囊舒缩的药物；利用大肠杆菌或其它细菌进行药物敏感性实验。寻找抑制细菌生长的药物，并研究 其作用规律，以便为胆道感染的防治提供线索。动物组织、细胞的培养也常用此种方法。离体实验的优点是方法比较简单，一般不需要很复杂 的仪器设备。实验条件比较容易控制，牵涉的人力较少，因此常被列为分析性研究的一种手段。不足之处是模拟的存活条件毕竟与整体的实际 情况有较大的出入，其结果也往往与体内的变化有一定距离，因此可以作为整体研究的补充和参考。 5．瘘管法用无菌手术方法给动物造成不同的人造瘘管如胃肠道瘘管、膀胱瘘管、唾液腺瘘管、食道瘘管、胆囊瘘管等。这些瘘管可以收集 内脏液体，是生理学消化研究的主要方法。此种方法是慢性动物实验所常用的方法。慢性动物实验一般是先在无菌操作下制备好实验模型（瘘 管法是其中一种），待动物恢复健康后进行研究。这类研究方法的优点在于被研究的对象，其机体内外环境已处于较自然的相对平衡状态，条 件比较稳定，所得的结果接近生理情况。但需要事先制备，术后护理，等动物恢复健康后才能从事实验，花费时间较长，工作量较大，因而在 选用上受到一定限制。除了用手术制备的动物实验外，运用药物或食铒等措施制备病理模型，如诱发各种实验性动物疾病模型的方法也可归为 慢性动物实验。 6．移植法一般是将动物的器官、组织或细胞进行相互移植的一种方法。如骨髓移植时，将小鼠A（供体）的骨髓注入到小鼠B的血液中 （受体），很快可见脾结节化（脾造血）。脾结节的数量反应了造血干细胞的多少，由此可以观察干细胞的变化。各小鼠之间的骨髓移植叫同 种骨髓移植，同一品系小鼠内各小鼠之间的骨髓移植叫同系骨髓，小鼠骨髓移植给大鼠则叫异种骨髓移植。动物各种组织、器官的移植也是实 验研究中常用的方法。 7．生物电、活性观察法对动物体各种生物电用电生理记录仪进行观察记录，如心电、肌电、脑电等；对动物组织中各种活动物质用生物化 学法测定，如各种酶，激素等。 8．病理解剖学、组织学观察法采用肉眼观察、光镜和电镜检查，来观察、分析动物各种疾病时病理组织学改变。可从组织学的角度来探讨 疾病防治机理，例如通过阑尾组织节片和肉眼观察，分析口服中药、针刺或局部敷药对有炎症阑尾的影响，阐明不同证型时阑尾变化的病理学 特点以及某些病人用中西医结合非手术治疗后复发的原因。近年来由于电子显微技术的进展，不仅可以观察到病变时细胞内细胞器等亚细胞结 构的变化，而且也可以运用电子扫描方法对动物器官的微小结构进行完整的表层观察。 9．免疫学观察法注入抗原使动物致敏，制备各种抗血清，如常选用新西兰或大白耳家兔制备病原体免疫血清、间接免疫血清、抗补体抗体 血清、抗组织免疫血清等。采用免疫荧光技术、酶标记免疫技术、放射免疫测定技术、免疫电镜技术等对动物免疫后各种免疫变化进行检查。 10．其它方法如联体动物法，条件反射法、生物遗传法、放射生物法、药物化学等等。 动物实验的基本操作技术方法，根据实验顺序分述如下： 二、实验动物的抓取固定方法 正确的抓取固定动物，是为了不损害动物健康，不影响观察指标，并防止被动物咬伤，保证实验顺利进行。抓取固定动物的方法依实验内 容和动物类而定。抓取固定动物前，必须对各种动物的一般习性有所了解，抓取固定时既要小心仔细，不能粗暴，又要大胆敏捷，确实达到正 确抓取固定动物的目的。 （一）小鼠抓取固定方法 小鼠温顺，一般不会咬人，抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两 耳和颈部皮肤（见图11-1之一），将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可（图11-1之二）。人经验者直接 用左手小指钩起鼠尾，迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹 腔注射以及其他实验操作。如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时，则需将小鼠作一定形式的固定，解剖手术和心脏采血等均可使动物