GB17378.6-1998 量的塑料容器中盖紧,标上号码,称重,记下鲜重和其他数据 将几个塑料容器放在同一塑料袋中,并附上样品清单,结紧袋口,在低温冰箱中保存。 41.5.4中小型鱼样制备 4.1.5.4.1单个体样品:测量鱼的叉长,并于聚乙烯称样膜上称重。记下叉长和体重。 用蒸馏水或清洁表层海水(4,1.2.1)洗涤鱼样,将它放在工作台上,用塑料刀切除胸鳍并切开背鳍 附近自头至尾部的鱼皮(图3) 在鳃附近和尾部,横过鱼体各切一刀;在腹部,鳃和尾部两侧各切一刀。四刀只切在鱼体一侧,且不 得切太深,以免切开内脏,沾污肉片。最好在切片时,由另一人帮助按住鱼的头尾 用镊子将鱼皮与肉片分离,谨防外表皮沾污肉片 用另一把塑料刀将肌肉与脊椎分离,并用镊子取下肌肉。将组织盛于塑料容器中,称重并记录重量 若一侧的肌肉量不能满足分析用量,取另一侧肌肉补充 盖紧容器,贴上标签或记号,记录各所有数据,于低温冰箱中保存。 鉴定性腺性别 4.1-5.42多个体试样:制备方法如下。仔细记下各个体体长、鲜重、肌肉重。鉴定性别。个体数不应 少于6个,且性别应相同,大小相近 用匀浆器匀化鱼组织,将匀浆转入已知重量的塑料容器中,盖紧,贴上标签并称重,记下匀浆重和其 他数据。置于低温冰箱中存放。 4.1.5.5大型鱼样制备 若必要,将现场采集的样品(41.44)放在一2~4C冰箱中过夜,使部分解冻以便于切片。 用蒸馏水或清洁海水(4.1.2.1)洗涤鱼样,置于清洁的工作台上。剔除残存的皮和骨,用塑料刀切去 表层,再用另一把塑料刀重复操作一次,留下不受污染的均匀的肌肉组织。将肌肉组织放入塑料容器中, 盖紧,贴上标签,称重将全部数据记入记录表,样品存于低温冰箱中 4.1.5.6千样制备 将部分新鲜试样按4.1.6.1或4.1.6.2步骤烘千,计算干/湿比,以校正水分含量。干燥后的样品用 玛脑研钵磨碎,全部筛过80~100目(尼龙筛),供痕量元素分析用 4.1.6千重测定 4.1.6.1烘干 半开称量瓶的磨口盖,放入105℃烘箱中。2h后,取出称量瓶,置于干燥器中冷却30mn。 盖好瓶盖,用分析天平称重,记下重量。取5~10g生物制备样(41.5)于称量瓶中,盖好瓶盖,再称 重(±0.5mg)并记下重量。 将盛样品的称量瓶半开盖放入105C烘箱中。24h后取出,置于干燥器中冷却30mn。盖好瓶盖后 称重并记录所称重量。 重复烘干操作,至前后两次烘干后的重量差小于总重量的0.5%。计算干重和干/湿比。 4.1.6.2冷冻干燥 对类脂物含量高的生物样品,不能烘干至恒重,则须用冷冻干燥 准确称取1~2g生物制备样(41.5)于干净的冷冻干燥的样品容器中,冷冻干燥24h,再称重 次。再次冷冻干燥24h,再称重。两次称重的重量差应小于总重量的0.5%。否则,应继续干燥至符合要 计算干重和干/湿比(F)。 4.1.7注意事项 4.-1·7·1在实验室附近采集贻贝,不存在特殊的运输和贮藏问题。运往实验室时,仅须使贻贝样通风并 用海水保持润湿。采自潮间带的贻贝,在空气中可生存24h。浸在海水中的贻贝,会吸水并排泄废物。贻 贝在空气中,贝壳闭合,代谢速度大大降低,故运输时,不应将贻贝放在水中GB 17378．6一 1998 量的塑料容器中盖紧，标上号码，称重，记下鲜重和其他数据。 将几个塑料容器放在同一塑料袋中，并附上样品清单，结紧袋口，在低温冰箱中保存。 4.1.5.4 中小型鱼样制备 4.1.5.4.1 单个体样品：测量鱼的叉长，并于聚乙烯称样膜上称重。记下叉长和体重。 用蒸馏水或清洁表层海水（4.1.2.1)洗涤鱼样，将它放在工作台上，用塑料刀切除胸鳍并切开背鳍 附近自头至尾部的鱼皮（图3), 在鳃附近和尾部，横过鱼体各切一刀；在腹部，鳃和尾部两侧各切一刀。四刀只切在鱼体一侧，且不 得切太深，以免切开内脏，沾污肉片。最好在切片时，由另一人帮助按住鱼的头尾。 用镊子将鱼皮与肉片分离，谨防外表皮沾污肉片。 用另一把塑料刀将肌肉与脊椎分离，并用镊子取下肌肉。将组织盛于塑料容器中，称重并记录重量。 若一侧的肌肉量不能满足分析用量，取另一侧肌肉补充。 盖紧容器，贴上标签或记号，记录各所有数据，于低温冰箱中保存。 鉴定性腺性别。 4.1.5.4.2 多个体试样：制备方法如下。仔细记下各个体体长、鲜重、肌肉重。鉴定性别。个体数不应 少于 6个，且性别应相同，大小相近。 用匀浆器匀化鱼组织，将匀浆转入已知重量的塑料容器中，盖紧，贴上标签并称重，记下匀浆重和其 他数据。置于低温冰箱中存放 。 4.1.5.5 大型鱼样制备 若必要，将现场采集的样品（(4. 1.4. 4)放在一2-4'C冰箱中过夜，使部分解冻以便于切片。 用蒸馏水或清洁海水（4.1.2.1)洗涤鱼样，置于清洁的工作台上。剔除残存的皮和骨，用塑料刀切去 表层，再用另一把塑料刀重复操作一次，留下不受污染的均匀的肌肉组织。将肌肉组织放入塑料容器中， 盖紧，贴上标签，称重，将全部数据记入记录表，样品存于低温冰箱中。 41.5.6 干样制备 将部分新鲜试样按 4.1.6.1或 4.1.6.2步骤烘干，计算干／湿比，以校正水分含量。干燥后的样品用 玛脑研钵磨碎，全部筛过 80-100目（尼龙筛），供痕量元素分析用。 4.1．6 干重测定 41.6.1 烘干 半开称量瓶的磨口盖，放入 105℃烘箱中。2h后，取出称量瓶，置于干燥器中冷却 30 min. 盖好瓶盖，用分析天平称重，记下重量。取 5^10 g生物制备样（4.1.5)于称量瓶中，盖好瓶盖，再称 重（士0. 5 mg）并记 下重量。 将盛样品的称量瓶半开盖放入 105℃烘箱中。24 h后取出，置于干燥器中冷却 30 min。盖好瓶盖后 称重并记录所称重量。 重复烘干操作，至前后两次烘干后的重量差小于总重量的。.5 00。计算干重和干／湿比。 4.1.6.2 冷冻干燥 对类脂物含量高的生物样品，不能烘干至恒重，则须用冷冻干燥。 准确称取 1^-2 g生物制备样（4.1.5)于干净的冷冻干燥的样品容器中，冷冻干燥 24 h，再称重一 次。再次冷冻干燥 24 h，再称重。两次称重的重量差应小于总重量的0.5%。否则，应继续于燥至符合要 求 。 计算干重和干／湿比（F)o 4.1．了 注意事项 4.1-7.1 在实验室附近采集贻贝，不存在特殊的运输和贮藏问题。运往实验室时，仅须使贻贝样通风并 用海水保持润湿。采自潮间带的贻贝，在空气中可生存 24 h。浸在海水中的贻贝，会吸水并排泄废物。贻 贝在空气中，贝壳闭合，代谢速度大大降低，故运输时，不应将贻贝放在水中