吸管吹打骨髓细胞使其分散。 3)低渗处理：假如预热37℃的低渗液至7m1,用吸管轻轻吹打混匀， 置于37℃恒温水浴锅中，保温30分钟后取出，然后加入1ml新配制的甲醇 冰醋酸(3：1固定液)预固定，混匀后以800~1000转/分离心8分钟。 4)固定：弃去上清液。留下沉淀物加入固定液5ml,用吸管吹打混匀， 室温放置30分钟，离心。 5)再固定：方法同4。 6)制备细胞悬液：弃去上清液，留下沉淀物，加入新鲜固定液0.2~ 0.4l(视细胞多少而定)混匀，制成细胞悬液。 7)滴片：用吸管吸取细胞悬液少许，滴在清洁预冷的载玻片上，每 片滴2~3滴（不要重叠），然后顺玻片斜面用口轻轻吹散，晾干或酒精等火 焰干燥。 8)染色：用Giemsa原液和磷酸盐缓冲液(pH6.8)l:9配成Giemsa 染液，在玻片标本上滴几滴Giemsa染液铺匀。染色约为10分钟，倒去染液， 用自来水缓缓冲洗干净，晾干。 (2)观察：将标本细胞面朝上，置于低倍镜下观察，可见有较大的 原形的间期细胞核，寻找染色体分散的中期分裂相，移至视野中央，然后转 换油镜观察。 细胞中染色体的计数：为了避免计数时重复和遗漏，在计数前应先按该 细胞的染色体自然分布状态，大致划分为几个区域，然后按顺序数出各区域 染色体的实际数目，最后加在一起，即为该细胞染色体的总数。大鼠二倍体 细胞染色体数目，2n=42。 2. 实验动物染色体核型的观察 家兔、大白鼠、大。蜍等动物常作为生物学和医学的实验动物，如肿瘤 致畸等都是以动物为模型。因此，医学学生了解这些实验动物的核型非常必 (1)家兔染色体核型：家兔二倍体细胞中染色体，2=44，其雄性染色 体为XY型，雌性为XX型，油镜下可见到细胞中有三种类型的染色体：即 中央着丝粒染色体、亚中着丝粒染色体和近端着丝粒染色体。按照染色体大 小和着丝粒的位置可将染色体分为五组。 组号 染色体号 形态大小 着丝粒位置 A组 1~2 最大 中央 B组 3-8+X 较大 亚中，X在5~6之间 C组 913 中等 9号中央，余为亚中 D组 1417 较小 中央 E组 18~21+y 最小 近端，Y在19~20之间 2 吸管吹打骨髓细胞使其分散。 3） 低渗处理：假如预热 37℃的低渗液至 7ml，用吸管轻轻吹打混匀， 置于 37℃恒温水浴锅中，保温 30 分钟后取出，然后加入 1ml 新配制的甲醇、 冰醋酸（3：1 固定液）预固定，混匀后以 800～1000 转/分离心 8 分钟。 4） 固定：弃去上清液。留下沉淀物加入固定液 5ml，用吸管吹打混匀， 室温放置 30 分钟，离心。 5） 再固定：方法同 4。 6） 制备细胞悬液：弃去上清液，留下沉淀物，加入新鲜固定液 0.2～ 0.4ml（视细胞多少而定）混匀，制成细胞悬液。 7） 滴片：用吸管吸取细胞悬液少许，滴在清洁预冷的载玻片上，每 片滴 2～3 滴（不要重叠），然后顺玻片斜面用口轻轻吹散，晾干或酒精等火 焰干燥。 8） 染色：用 Giemsa 原液和磷酸盐缓冲液（pH6.8）1：9 配成 Giemsa 染液，在玻片标本上滴几滴 Giemsa 染液铺匀。染色约为 10 分钟，倒去染液， 用自来水缓缓冲洗干净，晾干。 （2） 观察：将标本细胞面朝上，置于低倍镜下观察，可见有较大的 原形的间期细胞核，寻找染色体分散的中期分裂相，移至视野中央，然后转 换油镜观察。 细胞中染色体的计数：为了避免计数时重复和遗漏，在计数前应先按该 细胞的染色体自然分布状态，大致划分为几个区域，然后按顺序数出各区域 染色体的实际数目，最后加在一起，即为该细胞染色体的总数。大鼠二倍体 细胞染色体数目，2n=42。 2． 实验动物染色体核型的观察： 家兔、大白鼠、大蟾蜍等动物常作为生物学和医学的实验动物，如肿瘤， 致畸等都是以动物为模型。因此，医学学生了解这些实验动物的核型非常必 要。 （1）家兔染色体核型：家兔二倍体细胞中染色体，2n=44，其雄性染色 体为 XY 型，雌性为 XX 型，油镜下可见到细胞中有三种类型的染色体：即 中央着丝粒染色体、亚中着丝粒染色体和近端着丝粒染色体。按照染色体大 小和着丝粒的位置可将染色体分为五组。 组号 染色体号 形态大小 着丝粒位置 A 组 B 组 C 组 D 组 E 组 1～2 3～8+X 9～13 14～17 18～21+Y 最大 较大 中等 较小 最小 中央 亚中，X 在 5～6 之间 9 号中央，余为亚中 中央 近端，Y 在 19～20 之间