注意如果需要去除RNA,可加入4山 RNase a(100mg/m溶液客户自备, 目录号:RT405-12),振荡15sec,室温放置5min 加入40 Jul Proteinase K溶液,涡旋10sec混匀,56°C放置20min,其间每7 min涡旋混匀数次。 3.加入600u缓冲液GB,充分颠倒混匀,70°C放置10min。此时溶液应变清 亮,简短离心以去除管盖内壁的液滴,然后挤压去除拭子,将尽可能多的裂解液 转移至新的离心管中。 注意1:加入缓冲液GB时可能会产生白色沉淀,一般70°C放置时会消失,不 会影响后续实验。如溶液未变清亮,说明细胞裂解不彻底,可能导致提取DNA 量少和提取出的DNA不纯。 注意2:如果由于拭子上细胞数少导致提取的基因组DNA少于1g,可以在 添加缓冲液GB的同时添加 Carrier rna(客户自备,目录号:RT416) 4.加300u无水乙醇,充分颠倒混匀,简短离心以去除管盖内壁的液滴。 注意加入无水乙醇后可能会出现絮状沉淀,但不影响DNA提取。 5.将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CR2中吸附柱CR2放入 收集管中).12,000rpm(-13,400x×g)离心30sec,倒掉收集管中的废液,将吸附 柱CR2放回收集管中。 注意:第4步液体总体积超过80u,分两次转移。注意:如果需要去除RNA，可加入4 μl RNase A(100 mg/ml)溶液(客户自备， 目录号:RT405-12)，振荡15 sec，室温放置5 min。 2. 加入40ul Proteinase K溶液，涡旋10 sec混匀，56°C放置20 min，其间每7 min涡旋混匀数次。 3. 加入600ul缓冲液GB，充分颠倒混匀，70°C放置10 min。此时溶液应变清 亮，简短离心以去除管盖内壁的液滴，然后挤压去除拭子，将尽可能多的裂解液 转移至新的离心管中。 注意1: 加入缓冲液GB时可能会产生白色沉淀，一般70°C放置时会消失，不 会影响后续实验。如溶液未变清亮，说明细胞裂解不彻底，可能导致提取DNA 量少和提取出的DNA不纯。 
 注意2: 如果由于拭子上细胞数少导致提取的基因组DNA少于1 μg，可以在 添加缓冲液GB的同时添加Carrier RNA(客户自备，目录号:RT416)。 4. 加300ul无水乙醇，充分颠倒混匀，简短离心以去除管盖内壁的液滴。 注意:加入无水乙醇后可能会出现絮状沉淀，但不影响DNA提取。 5. 将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CR2中(吸附柱CR2放入 收集管中)， 12,000 rpm (~13,400×g)离心30 sec，倒掉收集管中的废液，将吸附 柱CR2放回收集管中。 注意：第4步液体总体积超过800ul，分两次转移