如果稳定、较深的穿刺后仍没有腹水自由流出，可以用一只手稳定住针头的深 度和角度，另一只手将注射器从针头上移除，观察是否有液体从针头接口处滴 正如做腰椎穿制时那样 这种方法获取的腹水至少足以送检细胞计数和分 类计数。虽然实验室可能要求最少取1mL腹水行细胞计数和分类计数，但装满 ,个手工血细胞计数器大约需10L液体，而涂片进行细胞分类计数只需要几 微升。如果仅获取几滴腹水，应将其置于紫头管中并送检细胞计数和分类计 数，并告知实验室管内有一些腹水，尽管靠肉眼不容易看见。助手打开紫头管 并用其接住滴出的腹水 ,腹 可滴入紫头管内。如果操作者有耐心 要获取更多的腹水进行其他检 收典腹水讲行检香一腹水流出后，可可收集腹水讲行诊断性检杳。通常需要大的 25mL腹水来进行细胞计数 分类计数 化学检查 细菌培养。 最初我们 田 5mL注射器抽 大约5mL腹水。使用小注射器比大注射器更容易“感觉"到轻松 抽取腹水并看到腹水进入注射器。随后将5mL注射器从针头接口处小心移除， 以避免将针尖拉出腹膜腔。将注射器递给戴非无菌手套的助手。由助手将18G 或22G针头接到该注射器上，将1-2L腹水注射到含抗凝剂的玻璃管（通常为 紫头管)内。如果腹水在接触到抗凝剂之前凝结成块 则无法进行准确的细胞 数。 这也是为何先将其注射到紫头管内的原因。将5mL注射器中剩余的腹水注 射到不含抗凝剂的管中（通常为红头管）用于化学分析 如果需要进行培养或其他检查，则将20mL注射器连接到腹壁上的穿刺针头 上，并将注射器抽满腹水。该腹水用于接种血培养瓶。注入培养瓶中的腹水量 与血培养所需的血量相近，每瓶通常为10mL。助手取下培养瓶瓶盖上的酒精 并将 个新的(18G或 22G)针头连接到注射器以将腹水注入 养 刺过皮肤的针头不应用于接种培养瓶。操作者也应注意避免将气泡注入培养瓶 中。 可使用一个针头来接种多个培养瓶。笔者曾使用一个针头接种过多达20个培 养瓶（用于研究）而没有发生污染。但如果使用多个注射器将腹水注入血培养 瓶，则每个注射器均 应使用一个新的针头 这样做是为了降低在不同注射器间 转换针头时发生针刺伤的风险。（参见“成人自发性细菌性腹膜炎的诊断”，关于 处理腹水'一尚 如果需要进行多种其他检查，可使用多个注射器(20mL)或1个60mL注射器替 代单个20L注射器。例如，根据需要，我们将50L阴水送细胞学检香 50mL行结核菌涂片检查和培养18) 这些检查或其他非常规检查的确切样本要 求应与当地实验室协调一致。 ·些实验室要求将进行细胞学检查的腹水用注射 器或无菌杯立即送检。而其他实验室要求将腹水与固定剂混合后送检。（参见 “成人腹水的评估”，关于其他腹水检查 节 抽取大量腹水（治疗性腹腔穿刺）一大量腹腔穿刺放液定义为抽取的腹水量大于 5L[12]。用于诊断的腹水可使用小口径或大口径针头抽取。出于治疗目的抽取 的腹水至少应足够进行细胞计数和分类计数检查， 该检查可 期发现腹水感 染12]。（参见“成人自发性细菌性腹膜炎的诊断”，关于“解读腹水检查结果'一 节) 张力性腹水患者应抽取足量的腹水以降低腹内压，从而使患者感到舒适并尽量 隆低腹水参漏的可能性。如果已知患者有难治性腹水。尽可能多地抽出腹水可 推迟下次穿刺的时间。如果不清楚患者使用利尿剂的效果，则抽取约5L腹水如果稳定、较深的穿刺后仍没有腹水自由流出，可以用一只手稳定住针头的深 度和角度，另一只手将注射器从针头上移除，观察是否有液体从针头接口处滴 出，正如做腰椎穿刺时那样。这种方法获取的腹水至少足以送检细胞计数和分 类计数。虽然实验室可能要求最少取 1mL 腹水行细胞计数和分类计数，但装满 一个手工血细胞计数器大约需 10μL 液体，而涂片进行细胞分类计数只需要几 微升。如果仅获取几滴腹水，应将其置于紫头管中并送检细胞计数和分类计 数，并告知实验室管内有一些腹水，尽管靠肉眼不容易看见。助手打开紫头管 并用其接住滴出的腹水，腹水可滴入紫头管内。如果操作者有耐心，可根据需 要获取更多的腹水进行其他检查。 收集腹水进行检查 — 腹水流出后，可收集腹水进行诊断性检查。通常需要大约 25mL 腹水来进行细胞计数、分类计数、化学检查和细菌培养。最初我们使用 5mL 注射器抽取大约 5mL 腹水。使用小注射器比大注射器更容易“感觉”到轻松 抽取腹水并看到腹水进入注射器。随后将 5mL 注射器从针头接口处小心移除， 以避免将针尖拉出腹膜腔。将注射器递给戴非无菌手套的助手。由助手将 18G 或 22G 针头接到该注射器上，将 1-2mL 腹水注射到含抗凝剂的玻璃管(通常为 紫头管)内。如果腹水在接触到抗凝剂之前凝结成块，则无法进行准确的细胞计 数。这也是为何先将其注射到紫头管内的原因。将 5mL 注射器中剩余的腹水注 射到不含抗凝剂的管中(通常为红头管)用于化学分析。 如果需要进行培养或其他检查，则将 20mL 注射器连接到腹壁上的穿刺针头 上，并将注射器抽满腹水。该腹水用于接种血培养瓶。注入培养瓶中的腹水量 与血培养所需的血量相近，每瓶通常为 10mL。助手取下培养瓶瓶盖上的酒精 拭子，并将一个新的(18G 或 22G)针头连接到注射器以将腹水注入培养瓶。穿 刺过皮肤的针头不应用于接种培养瓶。操作者也应注意避免将气泡注入培养瓶 中。 可使用一个针头来接种多个培养瓶。笔者曾使用一个针头接种过多达 20 个培 养瓶(用于研究)而没有发生污染。但如果使用多个注射器将腹水注入血培养 瓶，则每个注射器均应使用一个新的针头。这样做是为了降低在不同注射器间 转换针头时发生针刺伤的风险。(参见“成人自发性细菌性腹膜炎的诊断”，关于 ‘处理腹水’一节) 如果需要进行多种其他检查，可使用多个注射器(20mL)或 1 个 60mL 注射器替 代单个 20mL 注射器。例如，根据需要，我们将 50mL 腹水送细胞学检查， 50mL 行结核菌涂片检查和培养[18]。这些检查或其他非常规检查的确切样本要 求应与当地实验室协调一致。一些实验室要求将进行细胞学检查的腹水用注射 器或无菌杯立即送检。而其他实验室要求将腹水与固定剂混合后送检。(参见 “成人腹水的评估”，关于‘其他腹水检查’一节) 抽取大量腹水(治疗性腹腔穿刺) — 大量腹腔穿刺放液定义为抽取的腹水量大于 5L[1,2]。用于诊断的腹水可使用小口径或大口径针头抽取。出于治疗目的抽取 的腹水至少应足够进行细胞计数和分类计数检查，该检查可在早期发现腹水感 染[1,2]。(参见“成人自发性细菌性腹膜炎的诊断”，关于‘解读腹水检查结果’一 节) 张力性腹水患者应抽取足量的腹水以降低腹内压，从而使患者感到舒适并尽量 降低腹水渗漏的可能性。如果已知患者有难治性腹水，尽可能多地抽出腹水可 推迟下次穿刺的时间。如果不清楚患者使用利尿剂的效果，则抽取约 5L 腹水