第一章生物的类群 实验一动物界的主要类群 实验二植物的主要类群 实验三实验动物解剖基础知识 实验四家兔的解剖 实验五大白鼠的解剖 第二章细胞生物学相关实验 实验一光学显微镜的构造和使用 实验二细胞的基本形态与结构 实验三细胞器的观察 实验四细胞膜的通透性和细胞的吞噬活动 实验五细胞组分的分离和鉴定 实验六 细胞骨架的显示与观察 实验七 细胞的显微测量 实验八 细胞的有丝分裂 实验九减数分裂 实验十细胞原代培养 实验十一细胞传代培养 实验十二培养细胞的换液 实验十三细胞的保存 实验十四细胞的复苏 实验十五细胞计数 实验十六细胞生长曲线（计数法） 实验十七培养细胞的分裂指数和集落形成率的测定 实验十八培养细胞的形态观察 实验十九细胞融合 第三章染色体制备与分析 实验一大白鼠骨髓细胞染色体的制备及观察 实验二人类外周血淋巴细胞培养及染色体标本制备 实验三人类非显带染色体核型分析 实验四人类染色体G显带技术及G带核型分析 实验五人类性染色质标本的制备与观察 实验六绒毛细胞染色体标本的制备 实验七脆性X染色体标本的制备与观察 实验八羊水细胞培养及染色体制备 实验九人类外周血淋巴细胞姐妹染色单体(SCE)互换技术 实验十人类染色体C带技术 实验十一人类高分辨染色体的制备和观察 第四章分子遗传学相关实验 实验一利用TSL从全血中直接制备人类染色体DNA 实验二外周血基因组DNA的提取 实验三基因突变分析(PCR-SSCP) 实验四质粒DNA的提取 实验五DNA的限制性酶切和琼脂糖凝胶电泳 实验六DNA片段的回收与纯化 实验七大肠杆菌感受态细胞的制备及转化 第五章人类遗传性状及系谱分析 实验一人类某些遗传性状的观察 实验二遗传病的系谱分析 实验三人类皮肤纹理分析 第六章分子细胞遗传学相关实验 实验一荧光原位杂交技术 第七章附录 一、培养液和常用试剂配制 二、常用缓冲液配制 三、生物学与遗传学相关学科数据库网址 四、人类染色体非显带和G带核型分析报告

实验一种子形态构造及幼苗类 实验二种子物理特性的 实验三种子a-淀粉酶和-淀粉酶活性的测 实验四种子蛋白质含量的测定——考马斯亮蓝. 实验五种子含水 实验六种子生活力四唑染色 实验七种子丙二醛含的 实验八温度对种子发芽 实验九种子活力的人工加速老法 实验十种子活力的四唑法(TTC法)定量定 实验十一种胚的离 实验十二种子的吸胀损伤和吸 实验十三种子引发的 实验十四种子的净 实验十五小麦种子醇溶蛋白聚丙烯酰胺凝胶电泳鉴定小麦品种的真实性和品 实验十六品种真实性的SSR分子标记

第一节 凝胶电泳技术 第二节 分子杂交技术 第三节 PCR技术 第四节 生物芯片 第五节 基因文库构建 第六节 酵母双杂交系统 第七节 DNA测序

01 实验目的 02 实验原理 03 实验药品、仪器 04 实验操作步骤 05 结果分析 06 注意事项

不同基因通过不同机制导致疾病发生 血红蛋白结构 基因结构和表达与疾病的研究策略 核糖核酸酶切分析 基因表达系列分析 (Serial Analysis of Gene Expression, SAGE) 抑制性差减杂交 (suppressive subtractive hybridization, SSH) 核酶技术确定基因在疾病中的作用 RNAi现象的发现 定位克隆 HGP与疾病相关基因的研究 双向凝胶电泳技术的应用

1、有丝分裂 2、减数分裂 3、果蝇性状观察与雌雄鉴别 4、果蝇一对相对性状的遗传分析 5、果蝇两对相对性状的遗传分析 6、果蝇的伴性遗传 7、果蝇唾腺染色体的制片与观察 8、核酸的琼脂糖凝胶电泳 9、PCR技术

核酸的基本操作技术： 1）核酸的简介 2）基因组DNA提取 3）质粒DNA提取 4）真核细胞总RNA提取 5）琼脂糖凝胶电泳 6）核酸分子杂交 7）聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction ,PCR) 8） RT-PCR

《生物化学实验》课程教学资源（讲义）实验四 蛋白质的聚丙烯酰胺凝胶电泳

针对地埋式污水处理系统的特点,将一种高浓度微生物制剂用于生物膜反应器的挂膜,研究了其在处理模拟家庭生活污水过程中的启动特性.在进水化学耗氧量、氨氮和总磷分别为750、48和7.5 mg·L-1的条件下,装置运行10 d后,对三者的去除率分别达到85%、58%和35%.光学显微镜、环境扫描电镜观察显示,随着系统的去除率逐渐升高,微生物的种类也在逐渐改变;聚合酶链式反应-变性梯度凝胶电泳的检测结果则表明,火山岩填料和悬浮填料表面生长的微生物种类较为丰富,虽然不同条件下微生物群落发生了不同程度变化,但是整个微生物系统仍保持相对的稳定性

1.质粒DNA的小量快速制备 2.质粒DNA的限制性内切酶酶切 3.DA的琼脂糖凝胶电泳