现代废水处理技术，按作用原理可分为物理法、化学法、物理化学法和生物 法四大类。 物理法是利用物理作用来分离废水中的悬浮物或乳浊物。常见的有格栅、筛 滤、离心、澄清、过滤、隔油等方法

一、制药工程是应用生化反应或化学合成以及各种分离单元操作,实现药物工业化生产的工程技术。 二、制药工程包括生物制药、化学制药和中药制药

实验一 细胞大小的测量.2 实验二 细胞膜的渗透性.5 实验三 线粒体的活体染色与观察.7 实验四 线粒体的分离制备与观察.9 实验五 植物液泡的活体染色与观察.12 实验六 叶绿体的分离与荧光观察.14 实验七 细胞内过氧化物酶的观察.17 实验八 细胞内含物的观察.19 实验九 细胞骨架的光学显微镜观察.23 实验十 植物原生质体分离和活性鉴定.26 实验十一 聚乙二醇法诱导的细胞融合.29 实验十二 细胞中DNA的Feulgen染色观察.31 实验十三 DNA和RNA的甲基绿-派洛宁原位染色法.35 实验十四 植物染色体结构与Giemsa分带技术.37 实验十五 染色体核仁组织区的银染法.41 实验十六 细胞凋亡的检测.44 实验十七 染色体荧光原位杂交技术.47 附录 1 细胞生物学实验室守则.53 附录 2 细胞生物学染色技术.55 附录 3 生物绘图与临时装片知识.57 附录 4 实验报告的书写.59

第一章 生物化学部分.1 实验一、双缩脲法测定血清蛋白质含量. 1 实验二、纸层析法观察转氨基作用. 2 实验三、血清醋酸纤维薄膜电泳. 4 实验四、血清丙氨酸氨基转移酶活性测定. 7 实验五、胰酶对蛋白质的消化和影响酶作用的因素. 10 实验六、酶的竞争性抑制作用. 13 实验七、血糖浓度的测定. 16 实验八、血清γ球蛋白的分离纯化与鉴定. 18 第二章 分子生物学部分.25 实验一、质粒 DNA 的提取制备与检测. 25 实验二、PCR 技术. 28 实验三、DNA 的限制性酶切与电泳. 31 实验四、DNA 连接实验. 38 实验五、重组 DNA 转化与篮白斑筛选. 41 实验六、SDS-PAGE 测定蛋白质的相对分子量. 44

实验一 透射电子显微镜的原理与演示 实验二 孚尔根反应（Feulgen Reaction） 实验三 染色体的标本制作及其组型实验 实验四 染色体G-带的分带技术 实验五 PEG介导的动物细胞融合技术 实验六 线粒体和液泡系的超活染色与观察 实验七 叶绿体的分离与荧光观察 实验八 细胞凝集反应 实验九 腹腔巨噬细胞吞噬功能检测方法 实验十 动物细胞微丝束的光学显微镜观察 实验十一 杂交瘤技术 实验十二 联会复合体的染色与观察 实验十三 细胞生物学设计性实验

第一节 蛋白质的生物学意义 第二节 蛋白质的元素组成 第三节 蛋白质的氨基酸组成 第四节 氨基酸的重要物理性质和功能 第五节 氨基酸的分离与纯化技术

实验一 光学显微镜的构造和使用 实验二 细胞的基本形态与结构 实验三 细胞器的观察 实验四 细胞膜的通透性和细胞的吞噬活动 实验五 细胞组分的分离和鉴定 实验六 细胞骨架的显示与观察 实验七 细胞的显微测量 实验八 细胞的有丝分裂 实验九 减数分裂 实验十 细胞原代培养 实验十一 细胞传代培养 实验十二 培养细胞的换液 实验十三 细胞的保存 实验十四 细胞的复苏 实验十五 细胞计数 实验十六 细胞生长曲线（计数法） 实验十七 培养细胞的分裂指数和集落形成率的测定 实验十八 培养细胞的形态观察 实验十九 细胞融合

对原生质体的分离、培养、融合及植株再生方面进行了简要的论述并根据对有关 文献的分析,讨论了原生质体研究中存在的问题及今后的发展趋势,指出植物原生质体的游 离、培养和融合技术在近20多年来得到了迅速的发展,今后在进一步加强原生质体培养基础 理论研究的同时,重点放在利用原生质体融合技术进行遗传性状的改良,以获得优良性状的个 体并通过无性途径固定下来

一、原料处理设备 二、固体发酵设备 三、机械搅拌通风发酵罐(生物反应器) 四、空气净化系统 五、培养基灭菌系统 六、产物分离与提取设备

本章学习内容包括：1，脂质的定义、脂质的元素构成、脂质的分类，命名、脂质的生物学功能。2、脂肪酸、脂肪酸的种类、脂肪酸的物理和化学性质、多价不饱和脂肪酸。3、三酰甘油酯和蜡。4、磷脂、糖脂、固醇酯以及脂蛋白。5、脂类物质的分离、提取与分析技术