实验十二兔肌肌酸激酶的分离纯化及部分性质的测定 、实验原理 肌酸激酶 Creatine Kinase(CK)通常存在于动物的心脏、肌肉以及脑等组织的细 胞浆和线粒体中,是一个与细胞内能量运转、肌肉收缩、ATP再生有直接关系的重要激 酶,它可逆地催化肌酸与ATP之间的转磷酰基反应: 肌酸激酶有四种同工酶形式:即肌肉型(MM)、脑型(BB)、杂化型(MB)和线粒体 型(MMi)。MM型主要存在于各种肌肉细胞中,BB型主要存在于脑细胞中,MB型主 要存在于心肌细胞中,上述3种肌酸激酶为胞浆肌酸激酶,而MiM型存在于线粒体内 膜上 细胞在线粒体上发生氧化磷酸化,产生ATP。但动物体内贮存能量的高能物质不是 ATP而是磷酸肌酸。能量贮存和运送是通过磷酸肌酸穿梭机制( reatine Phosphate Shuttle))来完成的,这个机制包含了肌酸激酶的线粒体型和肌肉型两种同工酶。氧化磷酸 化产生的ATP在 ATP-ADP转位酶( Translocase)的帮助下被直接送到位于线粒体内膜外 侧的线粒体型肌酸激酶所在部位,线粒体型肌酸激酶将ATP内的高能磷酸键转移到肌 酸上,变成ADP和高能物质磷酸肌酸。磷酸肌酸在胞内扩散到达肌原纤维( Myofibrils 肌原纤维的M区带上结合有肌肉型肌酸激酶,当肌肉收缩时,需要大量的ATP供给能 量,肌肉型肌酸激酶催化磷酸肌酸转化为AT,而反应产生的肌酸再扩散回线粒体,重 新磷酸化 肌酸激酶同工酶在临床诊断中有十分重要的意义,在各种病变包括肌肉萎缩和心肌 梗塞时,人的血清中肌酸激酶水平迅速提高,目前认为在心肌梗塞的诊断中,测定肌酸 激酶的活性比作心电图更为可靠。鉴于这个酶具有重要的生理功能和临床应用价值,因 而引起人们广泛的重视和深入的研究。 肌肉型肌酸激酶分子是有两个相同的亚基组成的二聚体。根据目前已经测定的兔、 人、鸡、鼠肌酸激酶的一级结构,M型亚基由387个氨基酸残基组成,分子量为43000 左右,分子内有8个巯基,但无二硫键。天然的肌酸激酶分子是一个紧密的球状结构 257
257 实验十二 兔肌肌酸激酶的分离纯化及部分性质的测定 一、实验原理 肌酸激酶 Creatine Kinase（CK）通常存在于动物的心脏、肌肉以及脑等组织的细 胞浆和线粒体中，是一个与细胞内能量运转、肌肉收缩、ATP 再生有直接关系的重要激 酶，它可逆地催化肌酸与 ATP 之间的转磷酰基反应： 肌酸激酶有四种同工酶形式：即肌肉型（ＭＭ）、脑型(BB)、杂化型(MB)和线粒体 型(MiMi)。MM 型主要存在于各种肌肉细胞中，BB 型主要存在于脑细胞中，MB 型主 要存在于心肌细胞中，上述 3 种肌酸激酶为胞浆肌酸激酶，而 MiMi 型存在于线粒体内 膜上。 细胞在线粒体上发生氧化磷酸化，产生 ATP。但动物体内贮存能量的高能物质不是 ATP 而是磷酸肌酸。能量贮存和运送是通过磷酸肌酸穿梭机制(Creatine Phosphaate Shuttle)来完成的，这个机制包含了肌酸激酶的线粒体型和肌肉型两种同工酶。氧化磷酸 化产生的 ATP 在 ATP-ADP 转位酶(Translocase)的帮助下被直接送到位于线粒体内膜外 侧的线粒体型肌酸激酶所在部位，线粒体型肌酸激酶将 ATP 内的高能磷酸键转移到肌 酸上，变成 ADP 和高能物质磷酸肌酸。磷酸肌酸在胞内扩散到达肌原纤维(Myofibrils)， 肌原纤维的 M-区带上结合有肌肉型肌酸激酶，当肌肉收缩时，需要大量的 ATP 供给能 量，肌肉型肌酸激酶催化磷酸肌酸转化为 ATP，而反应产生的肌酸再扩散回线粒体，重 新磷酸化。 肌酸激酶同工酶在临床诊断中有十分重要的意义，在各种病变包括肌肉萎缩和心肌 梗塞时，人的血清中肌酸激酶水平迅速提高，目前认为在心肌梗塞的诊断中，测定肌酸 激酶的活性比作心电图更为可靠。鉴于这个酶具有重要的生理功能和临床应用价值，因 而引起人们广泛的重视和深入的研究。 肌肉型肌酸激酶分子是有两个相同的亚基组成的二聚体。根据目前已经测定的兔、 人、鸡、鼠肌酸激酶的一级结构，M 型亚基由 387 个氨基酸残基组成，分子量为 43000 左右，分子内有 8 个巯基，但无二硫键。天然的肌酸激酶分子是一个紧密的球状结构
根据旋光色散研究的结果,这个酶的亚基大约有25-30%的a-螺旋,15%左右的β-折 叠 肌酸激酶是由两个亚基组成的寡聚酶,该酶在催化过程中,最小功能单位是亚基还是 二聚体,一直是有很大争议的问题。我系生化与分子生物学教研室的王希成教授等用化 学修饰和分子杂交的方法证明了肌酸激酶的两个亚基分别在二聚体中独立地起催化作 用,即最小功能单位是亚基 肌酸激酶的纯化方法有许多种,本实验采用的提纯方法为改进的Kuby法。该酶的 测活方法也有许多种,本实验采用的是pH-比色法 肌酸激酶的测活方法(pH比色法)如下 肌酸激酶在催化正向反应时,随着AP向肌酸上转移磷酰基的同时,生成等摩尔 的H,其最适pH为75~90,是一个宽阔的平台状,在此范围内测定H的生成速度 可以作为酶活力的指标。本实验采用百里酚蓝作为pH指示剂,在分光光度计上通过pH 比色法测定肌酸激酶的活性,在597nm波长下,监测吸光度的变化。在比色皿中酶催化 反应生成的H使溶液的pH值降低,底物溶液的颜色逐渐由深紫红色变为黄绿色,吸光 度值As不断降低。肌酸激酶测活的底物溶液通常可配制20ml,当天使用。配制方法 为:取10ml48 mmol/L的肌酸溶液,加入10ml0. Imol/L的MgAC2,2.0m01%的百里 酚蓝(称100mg百里酚蓝,加20ml乙醇溶解后再加水60mD,1.0ml0. Imol/L pH90的 Gly-NaOH缓冲液,称48 mg atP溶于此溶液,再补加水50ml,用0.1~0mo/ L NaOH 仔细调此溶液的颜色为深紫红色(吸光度为1.8~2.0)即可。 测活时,取10ml的底物溶液置于微量比色皿中,加入10μ酶溶液,迅速盖盖, 混匀后立即监测57nm处光吸收的变化,每15秒或30秒读一次吸光度值(As),共 读取5~6个数据点,用A597对时间作图,从图中求出每mn吸光度值的变化,即 △A597,按下式计算酶的比活力(U): 1.3×△439×V4 稀释倍数[μmol/( minong 其中:1.3为吸光度的变化换算成H的系数。VA=1.Oml(底物溶液),VB=0.0lml(加 入的酶溶液)。C为加入酶溶液的浓度。酶溶液浓度C的测定按其在280nm处的吸光度 值来确定,其百分吸光系数为E11cm=8.8 A3a×10 88×稀释倍数 258
258 根据旋光色散研究的结果，这个酶的亚基大约有 25-30％的α-螺旋，15 ％左右的β-折 叠。 肌酸激酶是由两个亚基组成的寡聚酶，该酶在催化过程中，最小功能单位是亚基还是 二聚体，一直是有很大争议的问题。我系生化与分子生物学教研室的王希成教授等用化 学修饰和分子杂交的方法证明了肌酸激酶的两个亚基分别在二聚体中独立地起催化作 用，即最小功能单位是亚基。 肌酸激酶的纯化方法有许多种，本实验采用的提纯方法为改进的 Kuby 法。该酶的 测活方法也有许多种，本实验采用的是 pH-比色法。 肌酸激酶的测活方法（pH-比色法）如下： 肌酸激酶在催化正向反应时，随着 ATP 向肌酸上转移磷酰基的同时，生成等摩尔 的 H+，其最适 pH 为 7.5～9.0，是一个宽阔的平台状，在此范围内测定 H+ 的生成速度， 可以作为酶活力的指标。本实验采用百里酚蓝作为 pH 指示剂，在分光光度计上通过 pH- 比色法测定肌酸激酶的活性，在 597nm 波长下，监测吸光度的变化。在比色皿中酶催化 反应生成的 H+使溶液的 pH 值降低，底物溶液的颜色逐渐由深紫红色变为黄绿色，吸光 度值 A597 不断降低。肌酸激酶测活的底物溶液通常可配制 20ml，当天使用。配制方法 为：取 10ml 48mmol/L 的肌酸溶液，加入 1.0ml 0.1mol/L 的 MgAC2，2.0ml 0.1％的百里 酚蓝(称 100mg 百里酚蓝，加 20ml 乙醇溶解后再加水 60ml)，1.0ml 0.1mol/L pH9.0 的 Gly-NaOH 缓冲液，称 48mg ATP 溶于此溶液，再补加水 5.0ml，用 0.1～0.2mol/L NaOH 仔细调此溶液的颜色为深紫红色（吸光度为 1.8～2.0）即可。 测活时，取 1.0ml 的底物溶液置于微量比色皿中，加入 10l 酶溶液，迅速盖盖， 混匀后立即监测 597nm 处光吸收的变化，每 15 秒或 30 秒读一次吸光度值(A597 )，共 读取 5～6 个数据点，用 A597 对时间作图，从图中求出每 min 吸光度值的变化，即 △A597，按下式计算酶的比活力（U）： ＝ 稀释倍数 B A C V A V U 3 597 1. [μmol／(min•mg)] 其中：1.3 为吸光度的变化换算成 H+的系数。VA =1.0ml (底物溶液)，VB =0.01ml (加 入的酶溶液)。C 为加入酶溶液的浓度。酶溶液浓度 C 的测定按其在 280nm 处的吸光度 值来确定，其百分吸光系数为 E 1％ 1cm=8.8。 ＝ 稀释倍数 8.8 A280 10 C
、实验步骤 1.兔肌肌酸激酶的分离纯化方法如下: 将兔子颈动脉放血杀死后剥皮,取50g大腿肌或背肌,去除结缔组织和神经后剪碎, 加150 ml 0.01mol/L Kcl,用组织打碎机(或食品加工机)和高速分散器各粉碎3次以上 每次不超过30s。冰浴搅拌提取15~30min,用8000/min,0℃,离心10min,弃 去沉淀,测上清体积为V1,取样0.5ml后,将其余上清加入研细的NH4Cl至浓度为 0.lmoL,用5mol/LNH4OH调pH至90,冰浴搅拌30min,加入1.5倍V1体积的95 %冷乙醇,20℃搅拌2.5h,-8℃,8000/mnin离心10min,弃沉淀,测上清体积为V2, 取样0.5m后加入VAml的2 mol/L MeSC4(pH=85)至终浓度为003moL,并补加1V 体积的95%冷乙醇,搅拌30min,-8℃,8000r/min离心10min,弃去上清,沉淀加 l/loⅥ体积的MgAC2(0.07molL,p=90)溶解悬浮(可置冰箱过夜),冰浴搅拌Ih后, 0℃,12000r/min离心10min,弃去沉淀,测上清体积为V3,取样0.5m后用0.5~1mol/L NaOH调pl=80,置冰盐浴内缓慢加入VB体积的95%的冷乙醇至终浓度为36% VB的计算式为: ①一AC的加入量)×06+a=036 TvB 搅拌30min后,-8℃,12000/min离心10min,弃去沉淀,测上清体积为V4, 取样0.5ml,置冰盐浴内缓慢加入Vc体积的95%的冷乙醇至终浓度为50% Vc的计算式为 ×036÷VC=05 搅拌3min后,-8℃,12000rmin离心10min,弃上清,沉淀溶于2~3mlpH90 005mo几L的柠檬酸铵溶液,即为Ⅴs,取样0.2ml,并对此缓冲液透析过夜,再对 1.7 mmol/L的NH4OH透析,0℃,12000r/min离心10min,弃去沉淀,测上清体积为 V6,取样0.5ml,其余的V6溶液用此NHOH透析液调蛋白的质量浓度为~5g/后上样 至DEAE-32离子交换层析柱,用00 Imol/L pH80的 Tris-HCl平衡缓冲液洗至基线平, 用凸形梯度洗脱法洗脱兔肌肌酸激酶,收集活性峰,合并得到样品,取样0.5m,其 余冰冻干燥得到最终的兔肌肌酸激酶样品。取样做SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳,测亚基 分子量,并检测其是否达到电泳一条带的纯度,再取样用凝胶层析测该酶的分子量
259 二、实验步骤 1. 兔肌肌酸激酶的分离纯化方法如下： 将兔子颈动脉放血杀死后剥皮，取 50g 大腿肌或背肌，去除结缔组织和神经后剪碎， 加 150ml 0.01mol/L KCl，用组织打碎机(或食品加工机)和高速分散器各粉碎 3 次以上， 每次不超过 30 s 。冰浴搅拌提取 15～30min，用 8000r/min ， 0℃， 离心 10min，弃 去沉淀，测上清体积为 V1，取样 0.5ml 后，将其余上清加入研细的 NH4Cl 至浓度为 0.1mol/L，用 5mol/L NH4OH 调 pH 至 9.0，冰浴搅拌 30min，加入 1.5 倍 V1 体积的 95 ％冷乙醇，20℃搅拌 2.5h，－8℃， 8000r/min 离心 10min，弃沉淀，测上清体积为 V2， 取样 0.5ml 后加入 VA ml 的 2 mol/L MgSO4(pH=8.5)至终浓度为 0.03mol/L，并补加 1.5 VA 体积的 95％冷乙醇，搅拌 30min ，－8℃，8000r/min 离心 10min，弃去上清，沉淀加 1/10 V1 体积的 MgAC2 (0.07mol/L，pH=9.0)溶解悬浮(可置冰箱过夜)，冰浴搅拌 1h 后， 0℃，12000r/min 离心 10 min，弃去沉淀，测上清体积为 V3，取样 0.5ml 后用 0.5～1mol/L NaOH 调 pH=8.0，置冰盐浴内缓慢加入 VB 体积的 95％的冷乙醇至终浓度为 36％。 VB的计算式为： 0.36 ( ) 0.6 3 3 2 ＝ ＋ － 的加入量 ＋ B B V V V MgAC V 搅拌 30min 后，－8℃，12000r/min 离心 10 min，弃去沉淀，测上清体积为 V4， 取样 0.5ml，置冰盐浴内缓慢加入 VC 体积的 95％的冷乙醇至终浓度为 50％。 VC的计算式为： 0.5 0.36 4 4 ＝ ＋ ＋ C C V V V V 搅拌 30min 后，－8℃，12000r/min 离心 10 min，弃上清，沉淀溶于 2～3ml pH 9.0 0.05mol/L 的柠檬酸铵溶液，即为 V5，取样 0.2ml，并对此缓冲液透析过夜，再对 1.7mmol/L 的 NH4OH 透析，0℃， 12000r/min 离心 10 min，弃去沉淀，测上清体积为 V6，取样 0.5ml，其余的 V6 溶液用此 NH4OH 透析液调蛋白的质量浓度为～5g/L 后上样 至 DEAE-32 离子交换层析柱，用 0.01mol/L pH 8.0 的 Tris-HCl 平衡缓冲液洗至基线平， 用凸形梯度洗脱法洗脱兔肌肌酸激酶，收集活性峰，合并得到 V7 样品，取样 0.5ml，其 余冰冻干燥得到最终的兔肌肌酸激酶样品。取样做 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳，测亚基 分子量，并检测其是否达到电泳一条带的纯度，再取样用凝胶层析测该酶的分子量
酶分离纯化过程实验记录表格的各个项目为:实验步骤、溶液体积(ml)、蛋白的 质量浓度(g/L)、总蛋白量mg)、比活力μmol/( mInong]、总活力pmo/min)、纯化 倍数和回收率 离子交换柱层析的方法是:取约10mL湿的DE-32阴离子交换纤维素,抽干后在 0.5 mol/L NaCl-NaOH溶液中浸泡30min,水洗至中性,在0.5 mol/L HCI中浸泡30min, 水洗至中性,在0.5 mol/L NaOH中浸泡30min,水洗至中性抽干,用0.0 Imol/L pH8.0 Tris-HCI平衡缓冲液浸泡过夜。凸形梯度洗脱液体系为:C1(混合瓶):001 mol/L pH80 Tris-HCI,5omL,(此瓶塞不可漏气);C2(贮液瓶):0.04 mol/L pH8.0 Tris-Hcl, l50mL。洗脱速度:0.2~0.3 ml/min,收集体积:2~3ml/管。要从上样开始收集,洗脱 完毕,逐管测定A280,选择A28较大的管测活,绘制洗脱图。凸形梯度洗脱用在此处 的优点是在前几十管分离杂蛋白时,盐梯度增长很快,而后几十管洗脱兔肌肌酸激酶时, 盐梯度变化缓馒,有利于该酶与杂蛋白的分离。洗脱后还可以逐管测电导,画出凸形梯 度洗脱曲线,并换算出该酶洗脱下来时相应的 Tris-HCl缓冲液的盐浓度 层析系统装置图如下: 2.肌酸激酶动力学参数的测定
260 酶分离纯化过程实验记录表格的各个项目为：实验步骤、溶液体积( ml)、 蛋白的 质量浓度(g/L) 、 总蛋白量(mg)、比活力[μmol／(min•mg)]、总活力(mol/min)、纯化 倍数和回收率。 离子交换柱层析的方法是：取约 10mL 湿的 DE-32 阴离子交换纤维素，抽干后在 0.5mol/L NaCl-NaOH 溶液中浸泡 30min ，水洗至中性，在 0.5mol/L HCl 中浸泡 30min， 水洗至中性，在 0.5mol/L NaOH 中浸泡 30min，水洗至中性抽干，用 0.01mol/L pH8.0 Tris-HCl 平衡缓冲液浸泡过夜。凸形梯度洗脱液体系为：C1（混合瓶）：0.01 mol/L pH8.0 Tris-HCl ，50mL，（此瓶塞不可漏气）；C2（贮液瓶）：0.04mol/L pH8.0 Tris-HCl ， 150mL。洗脱速度：0.2～0.3ml/min，收集体积：2～3ml/管。要从上样开始收集，洗脱 完毕，逐管测定 A280，选择 A280 较大的管测活，绘制洗脱图。凸形梯度洗脱用在此处 的优点是在前几十管分离杂蛋白时，盐梯度增长很快，而后几十管洗脱兔肌肌酸激酶时， 盐梯度变化缓馒，有利于该酶与杂蛋白的分离。洗脱后还可以逐管测电导，画出凸形梯 度洗脱曲线，并换算出该酶洗脱下来时相应的 Tris-HCl 缓冲液的盐浓度。 层析系统装置图如下： 2. 肌酸激酶动力学参数的测定：
(1)表观Km(ATP)和Vmax的测定 固定肌酸(Cr)的浓度,改变ATP的浓度 底物溶液:25m48 mmol/L Cr:0.25ml0.1 mol/L Me;0.5m01%百里酚蓝 025ml0.1mol/LGly- Naoh pH9.0:12/LATP加入量见表1: 表112g/LATP加入量表 试管号ATP终浓度(mo/L)ATP加入量(m 0 0.100 0.25 0.063 对以上试液调pH至90,最后用水调节体积至5Oml,分别测活。对上述数据进行 双倒数作图法处理,即用1/V对M/[ATP]作图(V=1.3×△As9),可求得表观Km(ATP) (2)表观Km(Cr)和Vm的测定 固定ATP浓度,改变肌酸(Cr)浓度 底物溶液:1.0mATP(12gL):0.25ml0.1 mol/L Mg;0.5ml0.1%百里酚蓝 025ml0.1mol/LGly- Naoh pHS.0;48 mmol/L Cr加入量见表2: 表248mmo/LCr加入量表
261 ⑴ 表观 Km (ATP) 和 Vmax 的测定： 固定肌酸(Cr)的浓度，改变 ATP 的浓度 。 底物溶液：2.5ml 48mmol/L Cr ；0.25ml 0.1mol/L Mg++；0.5ml 0.1％ 百里酚蓝； 0.25ml 0.1mol/L Gly-NaOH pH9.0；12g/L ATP 加入量见表 1： 表 1 12g/L ATP 加入量表 试管号 ATP 终浓度( mol/L ) ATP 加入量(ml) 1 4.0 1.0 2 2.0 0.5 3 1.0 0.25 4 0.5 0.125 5 0.4 0.100 6 0.25 0.063 对以上试液调 pH 至 9.0，最后用水调节体积至 5.0ml，分别测活。对上述数据进行 双倒数作图法处理，即用 1/V 对 1/［ATP］作图(V=1.3×△A597)，可求得表观 Km (ATP) 和 Vmax。 ⑵ 表观 Km (Cr) 和 Vmax 的测定： 固定 ATP 浓度，改变肌酸(Cr)浓度。 底物溶液：1.0ml ATP(12g/L)；0.25ml 0.1mol/L Mg++；0.5ml 0.1％百里酚蓝； 0.25ml 0.1mol/L Gly-NaOH pH9.0；48mmol/L Cr 加入量见表 2： 表 2 48mmol/L Cr 加入量表
试管号Cr终浓度(moL)Cr加入量(m) 7.5 0.52 0.344 2.0 0.208 对各试液调p至90,最后用水调节体积至50ml,分别测活。对上述数据进行双 倒数作图法处理,即用1/V对1Cr]作图(V=13×△A97),可求得表观Km(Cr)和Vmax 3.DINB修饰肌酸激酶的反应动力学及酶表面可反应硫基数及总巯基数的测定 蛋白质分子中的巯基与5,5-二硫双(2-硝基苯甲酸)DTNB)反应如下 反应结果为每当蛋白质分子中修饰掉一个SH,就产生一个芳硫负离子,芳硫负离 子在412nm处有光吸收,根据其摩尔吸光系数:ε=13600Lmol-lcm-1,可以计算被 修饰的巯基数。 (1)修饰反应动力学: 取10ml酶溶液(~lmg/m)置于微量比色皿中,加入10μDTNB溶液(10 mmol/L), 立即监测412nm处光吸收(A412)随时间变化的动力学过程。由于DINB的浓度[DINB] >>[E]酶浓度,所以修饰反应是伪一级反应。用(Ax-A)(Ax-A0)对时间进行半 对数作图,求出反应的速度常数 (2)肌酸激酶表面可反应巯基数和总巯基数的测定: 用微量比色皿分别测定没有变性剂和有变性剂存在下,酶溶液与DINB溶液充分反 应后的A412,按下式计算反应的巯基数,有变性剂的是总巯基数,变性剂可用SDS或
262 试管号 Cr 终浓度(mol/L) Cr 加入量(ml) 1 20 2.08 2 10 1.04 3 7.5 0.78 4 5.0 0.52 5 3.3 0.344 6 2.0 0.208 对各试液调 pH 至 9.0，最后用水调节体积至 5.0ml，分别测活。对上述数据进行双 倒数作图法处理，即用 1/V 对 1/［Cr］作图(V=1.3×△A597)，可求得表观 Km (Cr)和 Vmax 。 3. DTNB 修饰肌酸激酶的反应动力学及酶表面可反应巯基数及总巯基数的测定： 蛋白质分子中的巯基与 5,5'-二硫双(2-硝基苯甲酸)(DTNB)反应如下： 反应结果为每当蛋白质分子中修饰掉一个-SH，就产生一个芳硫负离子，芳硫负离 子在 412nm 处有光吸收，根据其摩尔吸光系数：ε＝13600 L. mol－1. cm －1，可以计算被 修饰的巯基数。 ⑴ 修饰反应动力学： 取 1.0ml 酶溶液(～1mg/ml)置于微量比色皿中，加入 10l DTNB 溶液（10mmol/L）， 立即监测 412nm 处光吸收(A412 )随时间变化的动力学过程。由于 DTNB 的浓度［DTNB］ ＞＞［E］酶浓度，所以修饰反应是伪一级反应。用(A－Ａt)/( A－Ａ0)对时间进行半 对数作图，求出反应的速度常数。 ⑵ 肌酸激酶表面可反应巯基数和总巯基数的测定： 用微量比色皿分别测定没有变性剂和有变性剂存在下，酶溶液与 DTNB 溶液充分反 应后的 A412，按下式计算反应的巯基数，有变性剂的是总巯基数，变性剂可用 SDS 或
脲。(文献值:总巯基数=8,可反应巯基数=2) 巯基数= A412×0.88×860 A280×13600 兔肌肌酸激酶(CK)的分子量=86000,C为酶浓度,C=A280/0.88/86000(mol/L)。 三、试剂 1.KCl0.0lmo/L200ml(0.15gKCl溶于200mlH2O 2NH4OH1.7 mmol/L1000ml(取0.12ml浓氨水,加1000mlH2O) 3.柠檬酸铵0.05 mol/L pH9.0100mnl(称12.15g溶于1000mlHO 4. Tris-HCl0.1mol/LpH8.01000ml(参见蔗糖酶实验) 5.NH4Cl研细10 6.NH4OH5moL100ml(公用) 7.MgSO420mo/LpH8.520ml(公用) 8.MgAC20.07mo/Lp9.0100ml(公用) 9.NaOH:0.20.51.02.05.0(mol/L)(公用) 10. HAC 0.2mol/L 95%CH3CHOH乙醇 12.粗盐 酶的纯化记录表 实验步骤体积蛋白质浓度总蛋白 比活力 总活力纯化倍数回收率 (ml)(mg/ml) (mg) (umol/(mg. min)(umol/min) 参考文献 1. Kenyon G L, Adv. Enzymol. Relat. Areas Mol. BioL., 1993, 54: 367 2. Seraydrarian M W. and Abbot b C. J Mol Cell Cardiol. 1976.8: 741 3. Nada L, Kuby S, Lardy H. Methods in Enzymol., 1954, 2: 605 4.姚启智,邹承鲁,生物化学与生物物理进展,1981,3:52
263 脲。(文献值：总巯基数= 8 ，可反应巯基数= 2 ) 兔肌肌酸激酶(CK)的分子量= 86000 ，C 为酶浓度，C= A280／0.88／86000 (mol/L)。 三、试剂 1. KCl 0.01mol/L 200ml (0.15g KCl 溶于 200ml H2O) 2. NH4OH 1.7mmol/L 1000ml (取 0.12ml 浓氨水，加 1000ml H2O) 3. 柠檬酸铵 0.05mol/L pH9.0 1000ml (称 12.15g 溶于 1000ml H2O) 4. Tris-HCl 0.1mol/L pH8.0 1000ml (参见蔗糖酶实验) 5. NH4Cl 研细 10g 6. NH4OH 5mol/L 100ml (公用) 7. MgSO4 2.0mol/L pH8.5 20ml (公用) 8. MgAC2 0.07mol/L pH9.0 100ml (公用) 9. NaOH ： 0.2 0.5 1.0 2.0 5.0 ( mol/L ) (公用) 10. HAC 0.2mol/L 11. 95% CH3CH2OH 乙醇 12. 粗盐 酶的纯化记录表： 实验步骤 体积 (ml) 蛋白质浓度 (mg/ml) 总蛋白 (mg) 比活力 (mol/(mg.min)) 总活力 (mol/min) 纯化倍数 回收率 1.0 100 参 考 文 献 1.Kenyon G L.,Adv. Enzymol. Relat. Areas Mol. Biol., 1993, 54: 367. 2. Seraydrarian M W.and Abbot B C. J.Mol.Cell.Cardiol., 1976, 8: 741. 3. Nada L. , Kuby S. , Lardy H. Methods in Enzymol., 1954, 2: 605. 4. 姚启智, 邹承鲁, 生物化学与生物物理进展, 1981, 3: 52。 13600 0.88 86000 280 412 412 = = A A C A 巯基数