山东第一医科大学（泰山医学院）：《病理生理学》课程实验指导（负责人：商战平）.pdf_大学文库

病理生理学实验指导一、学时分配：课程总学时：24学时二、实验内容：实验一家兔高钾血症学时数4 【目的与要求】： 1、掌握家免高钾血症模型的复制方法 2、观察高钾血症时家兔心电图变化的特征。 3、自行设计和实施抢救治疗方案 4、了解血钾升高后，对心肌细胞的毒性作用。【器材与药品】BL一420生物实验系统多媒体，输液器一套，气管插管，5m注射器，头皮针。3% 戊巴比妥钠，0.5%氯化钾，5%氯化钙，肝素生理盐水。【方法与步骤】称重、全麻、固定，行气管插管；分离颈总动脉插动脉插管并与压力换能器连接，测定血压；连接心电导联，右前肢（红，左前肢（黄），右下肢（黑），左下肢（绿），并将针头刺入皮下，观察心电；将充有肝素生理盐水的头皮针刺入家兔耳缘静脉内，然后与输液装置相连，输液瓶内盛0.5%氯化钾350ml。按下列步骤操作并观察记录心电和血压。 1.记录输入氯化钾前的心电、血压和心率； 2.以20滴/分速度滴入0.5%氯化钾30分钟，每间隔10分钟记录1次心电、血压和心率并观察心电图变化： 3.以60滴/分速度滴入0.5%氯化钾30分钟，每间隔10分钟记录1次心电、血压和心率并观察心电图变化： 4.取1%氯化钾2ml,静脉缓慢注入(15-20分钟)，记录心电、血压和心率，观察心电图变化，如无显著异常变化可再缓注215%氯化钾，直至出现室颤时停止推注，并立即用5%氯化钙静脉缓注抢教，同时观察心电图恢复状态，当恢复到注入1%氯化钾前状态时停止注入氯化钙； 5.再次快速静脉推注1%氯化钾，观察记录心电、血压和心率变化，直至心电图出现室颤或成一直线时为止，立即开胸观察心脏停跳状态，肺水肿、胸水、肝淤血等脏器变化状态，并记录、分析其形成机制。【实验讨论】 1、注射KC后，ECG有哪些改变，机理？ 2、出现高钾血症后，可设计几种抢救治疗方案？理论根据是什么？实验二缺氧学时数：4学时【实验目的】复制不同类型缺氧动物模型，观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化，分析其发牛机制 (一)家兔乏氧性缺氧【实验动物】家兔【器材与药品】LMS-2A(B)型二道生理记录仪，动脉插管，气管插管，1000ml再吸入式缺氧瓶，ml 注射器，注射针头，动脉夹，常规手术器械，血气分析仪，动脉套针；1%普鲁卡因，钠石灰，肝素生理盐水

病理生理学实验指导一、学时分配：课程总学时：24学时二、实验内容：实验一家兔高钾血症学时数4 【目的与要求】： 1、掌握家兔高钾血症模型的复制方法。 2、观察高钾血症时家兔心电图变化的特征。 3、自行设计和实施抢救治疗方案。 4、了解血钾升高后，对心肌细胞的毒性作用。【器材与药品】BL—420生物实验系统多媒体，输液器一套，气管插管，5ml注射器，头皮针。3% 戊巴比妥钠，0.5%氯化钾，5%氯化钙，肝素生理盐水。【方法与步骤】称重、全麻、固定，行气管插管；分离颈总动脉插动脉插管并与压力换能器连接，测定血压；连接心电导联，右前肢(红)，左前肢(黄)，右下肢（黑），左下肢(绿)，并将针头刺入皮下，观察心电；将充有肝素生理盐水的头皮针刺入家兔耳缘静脉内，然后与输液装置相连，输液瓶内盛0.5%氯化钾350ml。按下列步骤操作并观察记录心电和血压。 1.记录输入氯化钾前的心电、血压和心率； 2.以20滴/分速度滴入0.5%氯化钾30分钟，每间隔10分钟记录1次心电、血压和心率并观察心电图变化； 3.以60滴/分速度滴入0.5%氯化钾30分钟，每间隔10分钟记录1次心电、血压和心率并观察心电图变化； 4.取1%氯化钾2ml，静脉缓慢注入(15-20分钟)，记录心电、血压和心率，观察心电图变化，如无显著异常变化可再缓注2m1 5%氯化钾，直至出现室颤时停止推注，并立即用5%氯化钙静脉缓注抢救，同时观察心电图恢复状态，当恢复到注入1%氯化钾前状态时停止注入氯化钙； 5.再次快速静脉推注1%氯化钾，观察记录心电、血压和心率变化，直至心电图出现室颤或成一直线时为止，立即开胸观察心脏停跳状态，肺水肿、胸水、肝淤血等脏器变化状态，并记录、分析其形成机制。【实验讨论】 1、注射KCl后，ECG有哪些改变，机理？ 2、出现高钾血症后，可设计几种抢救治疗方案？理论根据是什么？实验二缺氧学时数：4学时【实验目的】复制不同类型缺氧动物模型，观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化，分析其发生机制。 (一)家兔乏氧性缺氧【实验动物】家兔【器材与药品】LMS-2A(B)型二道生理记录仪，动脉插管，气管插管，1000ml再吸入式缺氧瓶，lml 注射器，注射针头，动脉夹，常规手术器械，血气分析仪，动脉套针；1%普鲁卡因，钠石灰，肝素生理盐水

【方法与步骤】家免称重后仰卧位因定于兔台上，颈部剪毛，在1%普鲁卡因局麻下，手术分离气管和颈总动脉，行气管插管术，颈总动脉插管连于压力换能器，描记血压，在剑突处皮肤固定一丝线，连于拉力传感器描记呼吸；从耳缘静脉注入1%肝素生理盐水1mkg,行全身肝素化，上述手术完毕后作如下观 1、描记正常血压、呼吸、记录心率、呼吸频率，观察口唇粘膜及动脉插管内血液颜色。 2、将胶管将缺氧瓶内相通的玻璃管和气管插管相连接，使免的呼吸只能与缺氧瓶相通，立即开始记录开始缺氧时间。 3、在缺氧开始后5分钟、10分钟、20分钟时分别观察并记录血压、心率、呼吸频率、呼吸幅度、动脉血液及黏膜颜色变化。 (二)小鼠不同类型的缺氧【实验动物】：小白鼠【器材与药品】125m缺氧瓶，C0发生装置、5ml 2ml刻度吸管，1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子；钠石灰(NaOH-CaO)、甲酸、浓硫酸、5%亚硝酸钠(NaNO2),1%美蓝【方法与步骤】取体重相近的小白鼠5只，观察正常情况后做如下处理：第一只腹部皮下注入5%亚硝酸钠0.3ml,开始记时：第一只腹部皮下注人5%亚消酸纳0.3ml后.立即腹腔注时1%羊蓝0.5开治尸时第三只放入广口瓶中，然后与CO发生装置相连：第四只放入装有10克钠石灰的125ml广口缺氧瓶中用凡士林密封瓶口后开始记时。第五只作为正常对照，剖检前推颈椎断髓处死。观察各鼠的一股状态，呼吸，比较前两只鼠，的存活时间。死后同时剖检，比较肝脏和血液颜色（第二只除外），并分析机理。【实验讨论】上述几种缺氧的发生机制，应用理论分析其实验现象。实验三家兔实验性肺水肿学时数：4学时【实验目的】 1复制实验性肺水肿 2了解肺水肿的表现及发病机理。【实验药品及器材】婴儿秤、天平、呼吸描记装置，静脉导管及输液装置，手术器材一套，听诊器、烧杯、纱布、线、兔固定台。【实验步骤】一实验组 1、称重、全麻一侧颈外静脉插管，连结输液装置，缓慢输入生理盐水(5-10滴/分)。 2、连结呼吸装置，描记一段正常呼吸，并用听诊器听肺的呼吸音，输入37℃生理盐水（输入总量按 100m/kg,输液速度180-200滴/分)，待滴注接近完半时，立即输入肾上腺素（按肾上腺素 0.45ma/ka). 3.密切观察呼吸改变和气管内是否有粉红色泡沫液体溢出，并用听诊器听诊肺部有无湿性罗音出现。当证明肺水肿出现时，则夹住气管，处死动物，打开胸腔，把肺取出，计算肺系数，肉眼观察肺大体改变。切开肺，观察切面的改变，注意有无泡沫液体流出。二对照组与实验组不同的是不输入肾上腺素，其余相同

【方法与步骤】家兔称重后仰卧位因定于兔台上，颈部剪毛，在1%普鲁卡因局麻下，手术分离气管和颈总动脉，行气管插管术，颈总动脉插管连于压力换能器，描记血压，在剑突处皮肤固定一丝线，连于拉力传感器描记呼吸；从耳缘静脉注入1％肝素生理盐水1ml/kg，行全身肝素化，上述手术完毕后作如下观察： 1、描记正常血压、呼吸、记录心率、呼吸频率，观察口唇粘膜及动脉插管内血液颜色。 2、将胶管将缺氧瓶内相通的玻璃管和气管插管相连接，使兔的呼吸只能与缺氧瓶相通，立即开始记录开始缺氧时间。 3、在缺氧开始后5分钟、10分钟、20分鈡时分别观察并记录血压、心率、呼吸频率、呼吸幅度、动脉血液及黏膜颜色变化。（二）小鼠不同类型的缺氧【实验动物】：小白鼠【器材与药品】125ml缺氧瓶，CO发生装置、5ml、2ml刻度吸管，1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子；钠石灰（NaOH·CaO）、甲酸、浓硫酸、5％亚硝酸钠（NaNO2），1％美蓝。【方法与步骤】取体重相近的小白鼠5只，观察正常情况后做如下处理：第一只腹部皮下注入5%亚硝酸钠0.3ml，开始记时；第二只腹部皮下注人5%亚硝酸纳0.3ml后，立即腹腔注射1％美蓝0.5ml开始记时；第三只放入广口瓶中，然后与CO发生装置相连；第四只放入装有10克钠石灰的125ml广口缺氧瓶中用凡士林密封瓶口后开始记时。第五只作为正常对照，剖检前推颈椎断髓处死。观察各鼠的一般状态，呼吸，比较前两只鼠的存活时间。死后同时剖检，比较肝脏和血液颜色（第二只除外），并分析机理。【实验讨论】上述几种缺氧的发生机制，应用理论分析其实验现象。实验三家兔实验性肺水肿学时数：4学时【实验目的】 1.复制实验性肺水肿。 2.了解肺水肿的表现及发病机理。【实验药品及器材】婴儿秤、天平、呼吸描记装置，静脉导管及输液装置，手术器材一套，听诊器、烧杯、纱布、线、兔固定台。【实验步骤】一.实验组 1、称重、全麻、一侧颈外静脉插管，连结输液装置，缓慢输入生理盐水（5-10滴/分）。 2、连结呼吸装置，描记一段正常呼吸，并用听诊器听肺的呼吸音，输入37℃生理盐水(输入总量按 100ml/kg，输液速度180-200滴/分)，待滴注接近完毕时，立即输入肾上腺素(按肾上腺素 0.45mg/kg)。 3.密切观察呼吸改变和气管内是否有粉红色泡沫液体溢出，并用听诊器听诊肺部有无湿性罗音出现。当证明肺水肿出现时，则夹住气管，处死动物，打开胸腔，把肺取出，计算肺系数，肉眼观察肺大体改变。切开肺，观察切面的改变，注意有无泡沫液体流出。二.对照组与实验组不同的是不输入肾上腺素，其余相同

肺系数计算公式：肺系数=肺重量(g)体重(kg) 正常免肺系数为4-5。【实验讨论】实验组和对照组的不同结果，联系理论，分析肺水肿发生的机理。实验四氨中毒性肝性脑病学时数：4学时【实验目的】：论证氨在肝性脑病发病机理中的作用。【实验器材及药品】： 1%普鲁卡因溶液，复方氯化氨溶液，复方氯化纳溶液，手术器材一套，注射器二个(5ml、10ml),十二指肠插管一个。【实验步骤】一甲兔作肝大部切除，十二指肠内注入氯化氨溶液。 1.剪去腹部正中毛，1%的普鲁卡因溶液局部麻醉后，从剑突起作腹部正中切口，长约8cm,右手按住肝脏隔面，剪断肝与横膈间的镰状韧带，再将肝叶上翻，分离肝胃韧带，使肝叶完全游离，然后以右手食、中两指夹持粗棉线，沿肝左外叶、肝左中叶、右中叶和方形叶之根部结扎，待上述肝叶变成暗褐色时，逐叶剪除，将剩余肝叶轻轻送回腹腔，观察肝脏有无出血。 2.找到胃幽门部后，顺形找到十二指肠，距幽门部2cm处用粗棉线结扎，纵行剪开肠壁，将插管插入十二指肠，作荷包缝合固定。将十二指肠送回腹腔，并把插管的另一端留在腹庭外，关闭腹腔。 3.每隔5分钟，向肠腔内注入氯化氨溶液5ml,记录用药量，动物抽搐出现的时间，死亡时间，并注意观察动物的各种表现。二乙兔作假肝手术，十二指肠内注入氯化复溶液。 1肝脏手术同前，但不作肝脏结扎和切除，只把肝脏游离。 2.十二指肠内注入氯化氨溶液。 3.当注入药量达甲兔抽搐药量时，观察动物变化。然后继续注射氯化氨溶液直至动物出现抽搐，记录用药量及实验开始到抽搐出现的时间。三丙兔作肝大部切除，十二指肠注入氯化纳溶液手术方法同甲兔。十二指肠注入氯化纳溶液，观察动物的变化。【注意事项】： 1游离镰状初带时，道防刺破肝脏和隔肌，以免告成出血和气阀。 2.淤离肝脏时，动作应轻柔，以免肝脏破裂出血，结扎线应位于肝叶根部，以免勒破肝叶，注意保留残留的肝叶根部要长一点，以免结扎线脱落。 3.肝脏结扎要牢固，以免出血。在实验中经常检查肝残端及腹腔有无出血，如有出血应及时结扎。 4.经常检查十二指肠插管是否脱落，以免药液不能注入肠腔。【讨论】 1.本次实验结果如何？三组有何差异？为什么？ 2你认为氨在肝性脑病发病机理中的作用如何？实验五家兔失血性休克学时数：4学时【目的要求】 1.复制家免失血性休克。 2.观察休克时动物的表现及微循环的变化

肺系数计算公式：肺系数=肺重量（g）/体重（kg）正常兔肺系数为4-5。【实验讨论】实验组和对照组的不同结果，联系理论，分析肺水肿发生的机理。实验四氨中毒性肝性脑病学时数：4学时【实验目的】：论证氨在肝性脑病发病机理中的作用。【实验器材及药品】：1%普鲁卡因溶液，复方氯化氨溶液，复方氯化纳溶液，手术器材一套，注射器二个（5ml、l0ml），十二指肠插管一个。【实验步骤】：一.甲兔作肝大部切除，十二指肠内注入氯化氨溶液。 1.剪去腹部正中毛，1%的普鲁卡因溶液局部麻醉后，从剑突起作腹部正中切口，长约8cm，右手按住肝脏隔面，剪断肝与横膈间的镰状韧带，再将肝叶上翻，分离肝胃韧带，使肝叶完全游离，然后以右手食、中两指夹持粗棉线，沿肝左外叶、肝左中叶、右中叶和方形叶之根部结扎，待上述肝叶变成暗褐色时，逐叶剪除，将剩余肝叶轻轻送回腹腔，观察肝脏有无出血。 2.找到胃幽门部后，顺形找到十二指肠，距幽门部2cm处用粗棉线结扎，纵行剪开肠壁，将插管插入十二指肠，作荷包缝合固定。将十二指肠送回腹腔，并把插管的另一端留在腹庭外，关闭腹腔。 3.每隔5分钟，向肠腔内注入氯化氨溶液5ml，记录用药量，动物抽搐出现的时间，死亡时间，并注意观察动物的各种表现。二.乙兔作假肝手术，十二指肠内注入氯化氨溶液。 1.肝脏手术同前，但不作肝脏结扎和切除，只把肝脏游离。 2.十二指肠内注入氯化氨溶液。 3.当注入药量达甲兔抽搐药量时，观察动物变化。然后继续注射氯化氨溶液直至动物出现抽搐，记录用药量及实验开始到抽搐出现的时间。三.丙兔作肝大部切除，十二指肠注入氯化纳溶液。手术方法同甲兔。十二指肠注入氯化纳溶液，,观察动物的变化。【注意事项】： 1.游离镰状韧带时，慎防刺破肝脏和膈肌，以免造成出血和气胸。 2.淤离肝脏时，动作应轻柔，以免肝脏破裂出血，结扎线应位于肝叶根部，以免勒破肝叶，注意保留残留的肝叶根部要长一点，以免结扎线脱落。 3.肝脏结扎要牢固，以免出血。在实验中经常检查肝残端及腹腔有无出血，如有出血应及时结扎。 4.经常检查十二指肠插管是否脱落，以免药液不能注入肠腔。【讨论】 1.本次实验结果如何？三组有何差异？为什么？ 2.你认为氨在肝性脑病发病机理中的作用如何？实验五家兔失血性休克学时数：4学时【目的要求】 1.复制家兔失血性休克。 2.观察休克时动物的表现及微循环的变化

3探讨失血性休克的发病机理。【药品与器材】25%乌拉坦溶液，1%普鲁卡因溶液，0.3%肝素溶液，生理盐水，微循环灌流液。手术器材一套，BL一410多媒体，微循环灌流装置，输血输液装置，动、静脉套管，测中心静脉压装置，1m1、10ml注射器各1只。温度计。【实验步骤】 1、取家兔一只称重后由耳缘静脉注入25%乌拉坦溶液(4ml/kg〉。 2、动物仰卧固定于实验台，在甲状软骨下切开颈正中皮肤约6cm,钝性分离颈部软组织，游离出左侧颈总动脉和右侧颈外静脉，穿线后备用。 3、左侧腹股沟部位触及动脉博动后，沿动脉走行方向作3c皮肤切口，分离出股动脉，穿线、插入动脉插管，以备放血。 4、在右侧腹直肌旁作6cm纵切口，钝性分离肌肉，打开腹腔后，推开大网膜，找出一段游离度较大的小肠肠袢，轻轻的从腹腔中拉出，放置在微循环灌流盒中，显微镜下观察微循环的变化。 5、将动脉导管插入左侧颈总动脉，连接血压测量装置。将连接输液装置的静脉导管插入右侧颈外静脉，以备输液。将连接于记录仪的呼吸描记装置夹住家兔胸部呼吸起伏较大的部位，打开呼吸描记装置， 6、放血前观察各项生理指标，包括一般情况，皮肤粘膜颜色、肛温、血压、呼吸及肠系膜微循环的变化 7、从股动脉放血至50ml的注射器内，边放血边观察血压的变化，一直到血压降至40mmHg,调整注射器内血量，使血压维持在此水平（注射器内加入少量肝素）。 8、维持血压在40mmHg15-20分钟，观察注射器内血量的增减，失血期动物各项指标和微循环的变化。 9、停止放血，将注射器内的血液倒入输液瓶内，快速从静脉输回原血和失血量等量的生理盐水 (150滴/分)，进行紧急抢救。输血输液后，再观察动物的一股情况、生理指标、微循环的改变。还可根据休克的病理生理学改变自行设计抢救方案，再观察抢救结果。【实验讨论】家免失血性休克不同时期血压、微循环口径有何变化？为什么？实验六急性右心衰竭（选做实验） [实验目的 1.学习复制急性右心衰竭的模型 2.观察右心衰竭时血流动力学的主要变化。 3.通过少对实验的观察分析，加深对心力衰竭的发生机理及病理生理变化的理解。 [实验原理到通过急性肺小血管栓塞，引起右心后负荷增加；通过大量静脉输液，引起右心前负荷增加。由于右心前、后负荷的过度增加，造成右心室收缩和舒张功能降低，而导致急性右心衰竭。 [实验对像] 家免。体重2.0~3.0kg,雌雄不限。 [实验器材及药品动物手术器械一套、兔手术台、BL一410生物机能实验系统、输液及中心静脉压测量装置、三通开关、静脉导管、动脉导管、气管插管、动脉夹、听诊器、注射器(50ml、10ml、5ml、1ml咯一个)、针头、100℃温度计、0.3%肝素溶液、生理盐水、液体石蜡、1%普鲁卡因、20%乌拉坦溶液。 [实验步骤与观察刻 1.取健康家兔一只，称重，由耳缘静脉注射20%乌拉坦3~5m/kg后，仰卧固定于兔手术台上，颈部剪毛，颈部正中做5~7cm长的切口。 (若全麻不满意，可在颈部正中皮下注射1%普鲁卡因2~3ml

3.探讨失血性休克的发病机理。【药品与器材】25%乌拉坦溶液，1%普鲁卡因溶液，0.3% 肝素溶液，生理盐水，微循环灌流液。手术器材一套，BL—410多媒体，微循环灌流装置，输血输液装置，动、静脉套管，测中心静脉压装置，1m1、10ml注射器各1只。温度计。【实验步骤】 1、取家兔一只称重后由耳缘静脉注入25%乌拉坦溶液〈4ml/kg〉。 2、动物仰卧固定于实验台，在甲状软骨下切开颈正中皮肤约6cm，钝性分离颈部软组织，游离出左侧颈总动脉和右侧颈外静脉，穿线后备用。 3、左侧腹股沟部位触及动脉博动后，,沿动脉走行方向作3cm皮肤切口，分离出股动脉，穿线、插入动脉插管，以备放血。 4、在右侧腹直肌旁作6cm纵切口，钝性分离肌肉，打开腹腔后，推开大网膜，找出一段游离度较大的小肠肠袢，轻轻的从腹腔中拉出，放置在微循环灌流盒中，显微镜下观察微循环的变化。 5、将动脉导管插入左侧颈总动脉，连接血压测量装置。将连接输液装置的静脉导管插入右侧颈外静脉，以备输液。将连接于记录仪的呼吸描记装置夹住家兔胸部呼吸起伏较大的部位，打开呼吸描记装置。 6、放血前观察各项生理指标，包括一般情况，皮肤粘膜颜色、肛温、血压、呼吸及肠系膜微循环的变化。 7、从股动脉放血至50ml的注射器内，边放血边观察血压的变化，一直到血压降至40mmHg，调整注射器内血量，使血压维持在此水平（注射器内加入少量肝素）。 8、维持血压在4OmmHg15-20分钟，观察注射器内血量的增减，失血期动物各项指标和微循环的变化。 9、停止放血，将注射器内的血液倒入输液瓶内，快速从静脉输回原血和失血量等量的生理盐水（150滴/分），进行紧急抢救。输血输液后，再观察动物的一股情况、生理指标、微循环的改变。还可根据休克的病理生理学改变自行设计抢救方案，再观察抢救结果。【实验讨论】家兔失血性休克不同时期血压、微循环口径有何变化？为什么？实验六急性右心衰竭（选做实验） [实验目的] 1.学习复制急性右心衰竭的模型。 2.观察右心衰竭时血流动力学的主要变化。 3.通过对实验的观察分析，加深对心力衰竭的发生机理及病理生理变化的理解。 [实验原理] 通过急性肺小血管栓塞，引起右心后负荷增加；通过大量静脉输液，引起右心前负荷增加。由于右心前、后负荷的过度增加，造成右心室收缩和舒张功能降低，而导致急性右心衰竭。 [实验对象] 家兔。体重2.0～3.0 kg，雌雄不限。 [实验器材及药品] 动物手术器械一套、兔手术台、BL—410生物机能实验系统、输液及中心静脉压测量装置、三通开关、静脉导管、动脉导管、气管插管、动脉夹、听诊器、注射器(50ml、1Oml、5ml、1ml各一个)、针头、100℃温度计、0.3%肝素溶液、生理盐水、液体石蜡、1%普鲁卡因、20%乌拉坦溶液。 [实验步骤与观察] 1.取健康家兔一只，称重，由耳缘静脉注射20%乌拉坦3～5ml/kg后，仰卧固定于兔手术台上，颈部剪毛，颈部正中做5～7cm长的切口。（若全麻不满意，可在颈部正中皮下注射1%普鲁卡因2～3ml

做局部浸润麻醉。) 2.手术分离：气管、颈总动脉和颈外静脉。 3.分离注意：气管位于颈部正中，用止血钳在舌骨下肌群正中插入，并向前、后两端扩张创口，然后将左右胸骨舌骨肌向两侧拉开，即暴露出气管。分离气管与食管之间的结缔组织，在气管背侧穿线备用。颈总动脉位于气管两侧，用手触之有搏动感。颈总动脉与颈部神经被束在颈动脉鞘内，细心分离左侧的颈动脉鞘膜，分离颈总动脉长4~5cm,穿两根线备用。颈外静脉分布很浅，在皮下胸锁乳突肌外缘。将右侧切开之皮肤，用手指在皮肤外面向上顶起，即可见到该静脉（呈暗紫色的粗大血管)。用止血钳沿血管走行方向钝性分离，分离长度3~4cm,穿两线备用。 4.全身肝素化：耳缘静脉注射0.3%肝素溶液2mkg体重。 5插管： (1)气管插管。在甲状软骨下0.5~1cm处两个软骨环之间剪开气管，再向头端作一纵切口，使之呈倒"T"形，插入气管插管，并用线缚紧固定。 (2)左侧颈总动脉插管。用于描记动脉血压。插管前首先结扎颈总动脉远心端，近心端用动脉夹头住（使两端距离尽可能张）。然后用眼科剪在靠近远心端结处的动脉壁上剪一斜口（为管径的13 ~12)，插入预先充满肝素生理盐水的动脉导管，用已穿好的线结扎，并加以固定导管，以防脱落。缓慢松开动脉夹。 (3)右侧颈外静脉插管。用于输液和中心静脉压测量。插管时先用动脉夹夹住静脉近心端，待静脉充盈后结扎远心端。用眼科剪在靠近远心端结扎线处呈角剪一小口（约为管径的13或12），插入预先充满肝素生理盐水的连有三通活塞的静脉导管，插入导管长度约5~7cm,此时导管口在上腔静脉近右心房入口处。结扎固定插管。 6.连接呼吸、血压描记装置，打开BL一410生物机能实验系统，描记正常的呼吸、血压曲线，测量记录中心静脉压、血压、心率 ,呼吸频率和深度、听心音强度，听胸背部有无水泡音，做肝中心静脉压返流实验（用手轻推压右肋弓下3秒，中心静脉压上升以cmH2O柱数表示）· 7复制隐性右心衰竭模型。 (1)用1m注射器抽取预先加温至38c的液体石蜡1ml,以每分钟0.2ml的速度缓慢注入耳缘静脉，同时密切观察血压、呼吸等变化。如有血压明显下降或中心静脉压明显上升，即停止注射。待血压和中心静脉压又恢复到原对照水平时，再缓慢注入液体石蜡，直至血压有轻度下降（降低13~ 2.7kPa),或中心静脉压有明显升高为止（一般液体石蜡用量为0.5~1.0ml,不超0.5mkg)。 (2)待动物呼吸、血压稳定后，以每分钟约5~10m/kg的速度快速由静脉导管输入生理盐水，输液过程中密切观察各项指标的变化（呼吸、血压、心率、心音强度、胸背部有无水泡音、中心静脉压以及肝中心静脉压返流实验等)。直至动物死亡 (3)动物死亡后，挤压胸壁，观察气管内有无分泌物溢出。剖开胸、腹腔，观察有无胸水和腹水；肝脏有无淤血肿大；肠系膜血管有无淤血，肠壁有无水肿；心脏各腔室体积有何改变；肺脏有无水肿；最后切开腔静脉，让血液流出，观察肝脏和心腔体积的变化. [注意事项 1颈外静脉壁薄，易损伤出血，分离时应仔细行钝性分离，切忌用剪刀剪切。 2.静脉导管的插人深度为5~7cm,在插管过程中如遇阻力，可将导管稍微退出，调整方向后再插，切忌硬插刺破血管。插好后可见中心静脉压计中液面随呼吸明显波动。 3注射液体石蜡时一定要缓慢，出现血压明显降低时应立即停止注射，否则会导致动物立即死亡。 4.全麻不宜过深，麻醉过深可因动物排尿增加而致实验时间延长， 5.尸检时注意不要损伤胸、腹腔血管，以免影响对胸腹水的观察。 [讨论题] 1,本实验是什么原因引起的右心衰竭？哪些指标变化是右心衰竭所致？

做局部浸润麻醉。） 2.手术分离：气管、颈总动脉和颈外静脉。 3.分离注意：气管位于颈部正中，用止血钳在舌骨下肌群正中插入，并向前、后两端扩张创口，然后将左右胸骨舌骨肌向两侧拉开，即暴露出气管。分离气管与食管之间的结缔组织，在气管背侧穿线备用。颈总动脉位于气管两侧，用手触之有搏动感。颈总动脉与颈部神经被束在颈动脉鞘内，细心分离左侧的颈动脉鞘膜，分离颈总动脉长4～5cm，穿两根线备用。颈外静脉分布很浅，在皮下胸锁乳突肌外缘。将右侧切开之皮肤，用手指在皮肤外面向上顶起，即可见到该静脉（呈暗紫色的粗大血管）。用止血钳沿血管走行方向钝性分离，分离长度3～4cm,穿两线备用。 4.全身肝素化：耳缘静脉注射0.3%肝素溶液2ml/kg体重。 5.插管：（1）气管插管。在甲状软骨下0.5～1cm处两个软骨环之间剪开气管，再向头端作一纵切口，使之呈倒"T"形，插入气管插管，并用线缚紧固定。（2）左侧颈总动脉插管。用于描记动脉血压。插管前首先结扎颈总动脉远心端，近心端用动脉夹夹住（使两端距离尽可能长）。然后用眼科剪在靠近远心端结扎处的动脉壁上剪一斜口（为管径的1/3 ～1/2），插入预先充满肝素生理盐水的动脉导管，用已穿好的线结扎，并加以固定导管,以防脱落。缓慢松开动脉夹。（3）右侧颈外静脉插管。用于输液和中心静脉压测量。插管时先用动脉夹夹住静脉近心端，待静脉充盈后结扎远心端。用眼科剪在靠近远心端结扎线处呈角剪一小口（约为管径的1/3或1/2），插入预先充满肝素生理盐水的连有三通活塞的静脉导管，插入导管长度约5～7cm，此时导管口在上腔静脉近右心房入口处。结扎固定插管。 6.连接呼吸、血压描记装置，打开BL—410生物机能实验系统，描记正常的呼吸、血压曲线，测量记录中心静脉压、血压、心率、呼吸频率和深度、听心音强度，听胸背部有无水泡音，做肝-中心静脉压返流实验（用手轻推压右肋弓下3秒，中心静脉压上升以cmH2O柱数表示）。 7.复制急性右心衰竭模型。（1）用1ml注射器抽取预先加温至38℃的液体石蜡1ml,以每分钟0.2ml的速度缓慢注入耳缘静脉，同时密切观察血压、呼吸等变化。如有血压明显下降或中心静脉压明显上升，即停止注射。待血压和中心静脉压又恢复到原对照水平时，再缓慢注入液体石蜡，直至血压有轻度下降（降低1.3～ 2.7kPa），或中心静脉压有明显升高为止(一般液体石蜡用量为0.5～1.Oml，不超0.5ml/kg)。（2）待动物呼吸、血压稳定后，以每分钟约5～10ml/kg的速度快速由静脉导管输入生理盐水，输液过程中密切观察各项指标的变化(呼吸、血压、心率、心音强度、胸背部有无水泡音、中心静脉压以及肝-中心静脉压返流实验等)。直至动物死亡。（3）动物死亡后，挤压胸壁，观察气管内有无分泌物溢出。剖开胸、腹腔，观察有无胸水和腹水；肝脏有无淤血肿大；肠系膜血管有无淤血，肠壁有无水肿；心脏各腔室体积有何改变；肺脏有无水肿；最后切开腔静脉，让血液流出,观察肝脏和心腔体积的变化。 [注意事项] 1.颈外静脉壁薄，易损伤出血，分离时应仔细行钝性分离，切忌用剪刀剪切。 2.静脉导管的插人深度为5～7cm，在插管过程中如遇阻力，可将导管稍微退出，调整方向后再插，切忌硬插刺破血管。插好后可见中心静脉压计中液面随呼吸明显波动。 3.注射液体石蜡时一定要缓慢，出现血压明显降低时应立即停止注射，否则会导致动物立即死亡。 4.全麻不宜过深，麻醉过深可因动物排尿增加而致实验时间延长。 5.尸检时注意不要损伤胸、腹腔血管，以免影响对胸腹水的观察。 [讨论题] 1.本实验是什么原因引起的右心衰竭？哪些指标变化是右心衰竭所致？