动物生理学实验指导 张素华编 石河子大学动物科技学院 动物医学系
1 动物生理学实验指导 张素华编 石河子大学动物科技学院 动物医学系
第一部分实验总论 第一节绪论 一、实验目标与要求 通过实验使学生初步掌握生理学实验的一些基本操作技能，学会检查人体功能活动的一些测试方 法，验证和巩固某些基本理论知识，培养认真、负责、严谨求实的态度和团结协作的良好作风，增强 对事物进行观察、比较、分析和综合的能力。为此要求： 1.实验前应仔细阅读实验指导，了解本次实验的目标、原理、步骤等，并复习有关理论知识。 2.实验时要按照实验指导及教师的指示进行操作和观察，客观、及时地记录实验现象或结果， 并联系讲授内容进行思考。 实后须及时整实记录。分实果，国定格式书写实告，黄时交负与 二、实验报告书写要求 因实验内容不同，可以填表、叙述等形式写出报告。书写要整洁，文字应简练、通顺。首先注明班 级、组别、姓名、实验日期，写出实验题目、实验目标等项目，然后着重书写实验结果以及分析和讨 论。并要求： 1.实验结果必须凭自己观察，随时记录，如实填写。有曲线记录的，经必要注明后，剪贴在实 验报告上。 2.分析和结论实验结果的分析，是根据学过的理论知识对结果进行解释。如果出现非预期的结 果时，应分析其可能的原因。实验结论，是从实验结果中归纳出概括性的判断，即本次实验所验证的 理论概要。 2
2 第一部分 实验总论 第一节 绪论 一、实验目标与要求 通过实验使学生初步掌握生理学实验的一些基本操作技能，学会检查人体功能活动的一些测试方 法，验证和巩固某些基本理论知识，培养认真、负责、严谨求实的态度和团结协作的良好作风，增强 对事物进行观察、比较、分析和综合的能力。为此要求： 1.实验前应仔细阅读实验指导，了解本次实验的目标、原理、步骤等，并复习有关理论知识。 2.实验时要按照实验指导及教师的指示进行操作和观察，客观、及时地记录实验现象或结果， 并联系讲授内容进行思考。 3.实验后须及时整理实验记录，分析实验结果，按照规定格式书写实验报告，按时交负责教师 评阅。 二、实验报告书写要求 因实验内容不同，可以填表、叙述等形式写出报告。书写要整洁，文字应简练、通顺。首先注明班 级、组别、姓名、实验日期，写出实验题目、实验目标等项目，然后着重书写实验结果以及分析和讨 论。并要求： 1.实验结果必须凭自己观察，随时记录，如实填写。有曲线记录的，经必要注明后，剪贴在实 验报告上。 2.分析和结论实验结果的分析，是根据学过的理论知识对结果进行解释。如果出现非预期的结 果时，应分析其可能的原因。实验结论，是从实验结果中归纳出概括性的判断，即本次实验所验证的 理论概要
三、生理实验室规则 1.须携带实验指导、记录本等文具准时进实验室，并穿戴实验衣帽。 2.遵守学习纪律，保持实验室安静：严肃、认真、安全地进行实验，不做与本实验无关的事情。 3.实验室的一切物品，未经教师许可，不得擅自取用或带出。 4.各组应用的实验器材、物品 ,在使用前应查点清楚，不得随意与别组调换：如遇机件不灵或 损坏时，应报告教师，以便及时修理或更换。 5.节约水电及一切消耗性物品，爱护仪器和用具。损坏物品应赔偿。 6.保持实验室整洁。公共器材和药品用毕后立即归还原处，动物尸体和废弃物应放到指定地点。 7.实验完毕，应将实验器材、用品和实验台收拾干净，查点清楚，放还原处。各小组轮流搞好 实验室的清洁卫生，关好窗户、水电，经教师检查无误后，方可离开。 3
3 三、生理实验室规则 1.须携带实验指导、记录本等文具准时进实验室，并穿戴实验衣帽。 2.遵守学习纪律，保持实验室安静；严肃、认真、安全地进行实验，不做与本实验无关的事情。 3.实验室的一切物品，未经教师许可，不得擅自取用或带出。 4.各组应用的实验器材、物品，在使用前应查点清楚，不得随意与别组调换；如遇机件不灵或 损坏时，应报告教师，以便及时修理或更换。 5.节约水电及一切消耗性物品，爱护仪器和用具。损坏物品应赔偿。 6.保持实验室整洁。公共器材和药品用毕后立即归还原处，动物尸体和废弃物应放到指定地点。 7.实验完毕，应将实验器材、用品和实验台收拾干净，查点清楚，放还原处。各小组轮流搞好 实验室的清洁卫生，关好窗户、水电，经教师检查无误后，方可离开
四、常用生理盐溶液的配制 1.常用生理盐溶液 生理学实验中常用的生理盐溶液有数种，其成分和用途各异，如下表所示。 任氏溶液 乐氏溶液 台氏溶液 生理盐水 药品名称(Ringer,s) (Locke,s) (Tyrode,s) 用于两栖类 用于哺乳类 用于哺乳类（小肠） 两栖类 哺乳类 化钠(NaC) 6.5克 9.0克 80古 6.5克 9.0克 氯化钾(KC1) 0.14克 0.42克 0.2克 氯化钙 (CaCla) 0.12克 0.24克 0.2克 碳酸氢钠 0.20克 0.1-0.3克 1.0克 磷酸二氢钠 0.05克 NaH,p0） 0.01克 氢化钱(MC1) 01古 葡萄糖 2.0克（可不加）1.0~2.5克 1.0克 蒸馏水加至100毫升 1000毫升 1000毫升 1000毫升1000毫升 配制生理盐溶液的方法，是先将各成份分别配成一定浓度的基础溶液（见下表），然后按表所载 份量混合之。 成 份 浓度(%) 任氏溶液 乐氏溶液 台氏溶液 氢化钠NaC1) 20 32.5毫升 45.6毫升 40.0毫升 氯化钾(KC1) 10 1.4毫升 4.2毫升 2.0毫升 氯化钙(CaCl,) 10 1.2毫升 2.4毫升 2.0毫升 磷酸二氢钠al,FPO) 1.0毫升 5.0毫升 氯化镁(MgC1,) 2.0毫升 碳酸氢钠(NaHC0,) 5 4.0毫升 2.0毫升 20.0毫升 葡萄糖 2.0克（可不加） 1.0-2.5克 1.0克 加蒸馏水至 1000毫升 1000毫升 1000毫升 应当注意的是，氯化钙溶液须在其它基础溶液混合并加蒸馏水稀释之后，方可一面搅拌 面逐滴加入，否则将生成钙盐沉淀 葡萄糖应在临用时加入，加入葡萄糖的溶液不能久置】 2。氨基甲酸乙酯常用于兔、猫、狗、蛙的全身麻醉药，使用方便，一次给药可维持4-5 小时。剂量为1克/公斤体重.即20%的溶液5ml。 4
4 四、常用生理盐溶液的配制 1． 常用生理盐溶液 生理学实验中常用的生理盐溶液有数种，其成分和用途各异，如下表所示。 药品名称 任氏溶液 (Ringer，s) 用于两栖类 乐氏溶液 （Locke，s） 用于哺乳类 台氏溶液 （Tyrode，s） 用于哺乳类（小肠） 生理盐水 两栖类 哺乳类 氯化钠（NaCl） 6.5 克 9.0 克 8.0 克 6.5 克 9.0 克 氯化钾（KCl） 0.14 克 0.42 克 0.2 克 — — 氯化钙 （CaCl2） 0.12 克 0.24 克 0.2 克 — — 碳酸氢钠 （NaHCO3） 0.20 克 0.1～0.3 克 1.0 克 — — 磷酸二氢钠 (NaH2PO4) 0.01 克 — 0.05 克 — — 氯化镁(MgCl2) — — 0.1 克 — — 葡萄糖 2.0 克（可不加） 1.0～2.5 克 1.0 克 — — 蒸馏水加至 1000 毫升 1000 毫升 1000 毫升 1000 毫升 1000 毫升 配制生理盐溶液的方法，是先将各成份分别配成一定浓度的基础溶液(见下表)，然后按表所载 份量混合之。 成 份 浓度(％) 任氏溶液 乐氏溶液 台氏溶液 氯化钠(NaCl) 20 32.5 毫升 45.6 毫升 40.0 毫升 氯化钾(KCl) 10 1.4 毫升 4.2 毫升 2.0 毫升 氯化钙(CaCl2) 10 1.2 毫升 2.4 毫升 2.0 毫升 磷酸二氢钠(NaH2PO4) 1 1.0 毫升 — 5.0 毫升 氯化镁(MgCl2) 5 — — 2.0 毫升 碳酸氢钠(NaHCO3) 5 4.0 毫升 2.0 毫升 20.0 毫升 葡萄糖 2.0 克(可不加) 1.0～2.5 克 1.0 克 加蒸馏水至 1000 毫升 1000 毫升 1000 毫升 应当注意的是，氯化钙溶液须在其它基础溶液混合并加蒸馏水稀释之后，方可一面搅拌一 面逐滴加入，否则将生成钙盐沉淀．葡萄糖应在临用时加入，加入葡萄糖的溶液不能久置。 2． 氨基甲酸乙酯常用于兔、猫、狗、蛙的全身麻醉药，使用方便，一次给药可维持 4-5 小时。剂量为 1 克／公斤体重．即 20％的溶液 5ml
第二节动物生理学常用动物及基本操作技术 一。实验动物 生理学实验主要以活的动物为对象，如鱼、蛙、家兔、小白鼠、大白鼠、羊、鸡等。实验动物 的选择必须根据不同的实验目的。如心脏生理实验要求心脏标本存活期长，所需条件简单一一可以选 蛙类等。接近保定动物必须遵守操作规程，密切注意动物反应。保证人和动物的安全 1.两柄类生物医学中常用蟾蜍和青蛙，分别属于两栖纲无尾目的蟾蜍科和蛙科。它们皮肤光 滑、湿润、有腺体无鳞片。蛙类的心脏在离体情况下仍有节奏地搏动很久，常用来研究心脏的生理、 药物对心脏的作用。腓肠肌和坐骨神经可用来观察外周神经的生理功能和骨酪肌的收缩。蛙的制动 般采用损毁脑及脊髓的办法。左手握蛙，用食指将蛙头下压成直角，右手指可触摸到柔软凹陷的枕骨 大孔，用蛙针刺入向前搅动捣毁脑。 2.家兔属哺乳动物兔型目。解剂学上，家兔颈部有降压神经独立分支，属于传入性神经，适 合做急性心血管实验。 家兔较驯服，一般不会咬人。但有的品种（如长毛兔）或在哺乳、刚产仔和有咬癖时也会咬人， 所以必须防备。家兔的脚爪锐利，若不小心或方法不当易被其抓伤，或造成兔子的创伤甚至导致流产 等。正确的捉兔方法是，一只手在兔子头前挡住，当它匍匐在地时，顺势大把抓住双耳及颈部皮毛， 承重在颈部皮毛上，迅速提起，另一只手托住臀部和下腹，抱在胸前。 二。常用麻醉剂 临床手术以及术前捕捉制动等，都会引起动物的疼痛、不适、恐惧等对身心的恶性刺激，还 会在动物体内引起实质性的变化，从而影响实验结果的质量。因此实验常在手术前对动物进行毁脑或 麻醉。麻醉措施也会在动物体内造成变化，但这些变化是能够预见和可以控制的，并且任何一项手术 都能引起比麻碎时更大的不适。 鼠等效果也好。由于戊巴比妥钠对心肌、血管平滑肌和呼吸中枢有抑制作用，一般不用于心 血管和呼吸机能方面的研究。麻醉时需有尼克刹米备用。 乌拉坦（氨基甲酸乙酯）可导致较持久的浅麻醉，对呼吸无明显影响，安全系数大。兔对其较 敏感，狗、猫、鸟类(1.25g/kg)、蛙类(2g/kg)等均可用。兔狗猫用量每公斤体量0.75~1g,配 成20%或25%溶液耳缘静脉注射。 三.手术器械与使用 手术器械是施行手术的必需工具，虽然手术器械的种类、样式很多，但其中有一些是各类手术 所必须使用的基本器械，正确和熟练地掌握这些器械的使用方法，对于保证手术操作的顺利进行关系 很大。 1.蛙类解剖器材
5 第二节 动物生理学常用动物及基本操作技术 一．实验动物 生理学实验主要以活的动物为对象，如鱼、蛙、家兔、小白鼠、大白鼠、羊、鸡等。实验动物 的选择必须根据不同的实验目的。如心脏生理实验要求心脏标本存活期长，所需条件简单——可以选 蛙类等。接近保定动物必须遵守操作规程，密切注意动物反应。保证人和动物的安全。 1.两栖类 生物医学中常用蟾蜍和青蛙，分别属于两栖纲无尾目的蟾蜍科和蛙科。它们皮肤光 滑、湿润、有腺体无鳞片。蛙类的心脏在离体情况下仍有节奏地搏动很久，常用来研究心脏的生理、 药物对心脏的作用。腓肠肌和坐骨神经可用来观察外周神经的生理功能和骨骼肌的收缩。蛙的制动一 般采用损毁脑及脊髓的办法。左手握蛙，用食指将蛙头下压成直角，右手指可触摸到柔软凹陷的枕骨 大孔，用蛙针刺入向前搅动捣毁脑。 2.家兔 属哺乳动物兔型目。解剖学上，家兔颈部有降压神经独立分支，属于传入性神经，适 合做急性心血管实验。 家兔较驯服，一般不会咬人。但有的品种（如长毛兔）或在哺乳、刚产仔和有咬癖时也会咬人， 所以必须防备。家兔的脚爪锐利，若不小心或方法不当易被其抓伤，或造成兔子的创伤甚至导致流产 等。正确的捉兔方法是，一只手在兔子头前挡住，当它匍匐在地时，顺势大把抓住双耳及颈部皮毛， 承重在颈部皮毛上，迅速提起，另一只手托住臀部和下腹，抱在胸前。 二．常用麻醉剂 临床手术以及术前捕捉制动等，都会引起动物的疼痛、不适、恐惧等对身心的恶性刺激，还 会在动物体内引起实质性的变化，从而影响实验结果的质量。因此实验常在手术前对动物进行毁脑或 麻醉。麻醉措施也会在动物体内造成变化，但这些变化是能够预见和可以控制的，并且任何一项手术 都能引起比麻醉时更大的不适。 鼠等效果也好。由于戊巴比妥钠对心肌、血管平滑肌和呼吸中枢有抑制作用，一般不用于心. 血管和呼吸机能方面的研究。麻醉时需有尼克刹米备用。 乌拉坦(氨基甲酸乙酯) 可导致较持久的浅麻醉，对呼吸无明显影响，安全系数大。兔对其较 敏感，狗、猫、鸟类（1.25g/kg）、蛙类（2g/kg）等均可用。兔狗猫用量每公斤体量 0.75～1g，配 成 20%或 25%溶液耳缘静脉注射。 三．手术器械与使用 手术器械是施行手术的必需工具，虽然手术器械的种类、样式很多，但其中有一些是各类手术 所必须使用的基本器械，正确和熟练地掌握这些器械的使用方法，对于保证手术操作的顺利进行关系 很大。 1.蛙类解剖器材
(1)剪刀：粗剪刀用于剪骨酪和皮肤等粗硬组织：手术剪用于剪肌肉、健膜等一般软组织：眼 科剪刀用于剪神经、血管、心包膜等细软组织。 (2)镊子：手术镊用于牵提皮肤夹捏肌肉等组织：眼科镊用于夹捏细软组织。 (3)探针：用于破坏脑和脊髓。 (4)玻钩：用于分离神经、血管。 (5)锌铜弓：用于对神经肌肉标本施加刺激，以检查其兴奋性。 (6)娃心夹：用于夹住心尖，另一端借缚线连于杠杆，以描记心脏舒缩。 (7)蛙板和蛙钉：用蛙钉将蛙腿固定于一约20cm×15Cm的木板上。制备神经肌肉标本，应在 清洁的玻璃板上操作，为此可在板中央嵌一玻璃板。 2.哺乳类动物手术器材 (1)手术刀：用于切开皮肤和器官。 (2)剪刀：剪毛用粗剪刀：剪线及一般软组织用手术剪刀：剪破血管、输尿管以便插管时使用 眼科剪刀。 (3)镊子：圆头镊子用于夹捏组织和牵提切口处的皮肤：眼科镊子用于夹捏细软组织 (4)止血钳：用于提起皮肤切口、分离皮下组织和夹钳血管止血。蚊式止血钳适用于分离小血 管及神经周围的结缔组织。 (5)动脉夹：用于阻断动脉血流。 (6)气管插管：急性动物实验时插入气管，以保证呼吸道通畅。 (?)动脉插管：急性动物实验时插入动脉，另一端接水银检压计或血压换能器。 (8)解剖台：固定动物，以便实验操作。有兔解剖台、狗解剖台。 (9)注射器：用于注射各种药物和溶液。 (10)搪瓷盆、杯等：用于放置手术器械、溶液、兔毛等。 四。生理手术的组织与实施 生理手术由密切相关的术前准备、手术实施和术后工作等三部分组成。 1.术前准备包括人员、器具和实验动物准备三个方面。 术者：是手术的执行者。应全面负责术前诊断，拟定手术计划和总结工作。 手术助手：是协助术者完成手术工作，所以应当了解手术进程及术中术者的意图，从扩创固定、 6
6 （1）剪刀：粗剪刀用于剪骨骼和皮肤等粗硬组织；手术剪用于剪肌肉、腱膜等一般软组织；眼 科剪刀用于剪神经、血管、心包膜等细软组织。 （2）镊子：手术镊用于牵提皮肤夹捏肌肉等组织；眼科镊用于夹捏细软组织。 （3）探针：用于破坏脑和脊髓。 （4）玻钩：用于分离神经、血管。 （5）锌铜弓：用于对神经肌肉标本施加刺激，以检查其兴奋性。 （6）蛙心夹：用于夹住心尖，另一端借缚线连于杠杆，以描记心脏舒缩。 （7）蛙板和蛙钉：用蛙钉将蛙腿固定于一约 20cm×15cm 的木板上。制备神经肌肉标本，应在 清洁的玻璃板上操作，为此可在板中央嵌一玻璃板。 2.哺乳类动物手术器材 （1）手术刀：用于切开皮肤和器官。 （2）剪刀：剪毛用粗剪刀；剪线及一般软组织用手术剪刀；剪破血管、输尿管以便插管时使用 眼科剪刀。 （3）镊子：圆头镊子用于夹捏组织和牵提切口处的皮肤；眼科镊子用于夹捏细软组织。 （4）止血钳：用于提起皮肤切口、分离皮下组织和夹钳血管止血。蚊式止血钳适用于分离小血 管及神经周围的结缔组织。 （5）动脉夹：用于阻断动脉血流。 （6）气管插管：急性动物实验时插入气管，以保证呼吸道通畅。 （7）动脉插管：急性动物实验时插入动脉，另一端接水银检压计或血压换能器。 （8）解剖台：固定动物，以便实验操作。有兔解剖台、狗解剖台。 （9）注射器：用于注射各种药物和溶液。 （10）搪瓷盆、杯等：用于放置手术器械、溶液、兔毛等。 四．生理手术的组织与实施 生理手术由密切相关的术前准备、手术实施和术后工作等三部分组成。 1.术前准备 包括人员、器具和实验动物准备三个方面。 术者：是手术的执行者。应全面负责术前诊断，拟定手术计划和总结工作。 手术助手：是协助术者完成手术工作，所以应当了解手术进程及术中术者的意图，从扩创固定
结扎止血、组织缝合都应使术者感到“得心应手”，如果不能很好地同术者配合，将影响手术进行。 器械助手：负责器械、术中负责传递器械、纱布及准备缝针、缝线。术后做好清理工作。 麻醉助手：除努力做到术中麻醉平稳和安全外，并负责对实验动物的全身检查、并作好记录。 监测动物生理状况，有特殊情况及时报告术者，做好急救工作。 保定助手：负责动物的保定，注意人畜安全：协助麻醉助手。 凡参加手术的人员应分工明确，密切协作，同心协力，确保手术顺利完成。 实验完成后，要及时处理动物。急性实验后处死动物，要考虑简便快速的方法，以减轻动物挣 扎的痛苦。可根据动物大小选择采用颈椎脱白法（如小鼠）、空气栓塞法（如兔）、打击法、急性大 量放血法、药物致死法和断头法等 五。基本生理手术操作 虽然生理手术的种类多样，手术的范围、大小和复杂程度也有很大的不同，但手术的基本操作， 如组织分离、止血、打结和缝合的技术是基本相同的。因此，掌握手术基本操作技术是做好一切手术 的基础。在学习生理手术过程中，必须认真作好基本功的训练，做到正确、熟练地掌握基本操作，才 能逐步做到动作稳健、敏捷、准确、轻柔，缩短手术时间，提高手术的效率和成功率。 1.组织分离组织分离包括使用带刃器械（刀、剪）作锐性切开和使用止血钳、手术刀柄或手 指等作纯性分离。 钝性分离是将有关器械或手指插入组织间隙内，用适当的力量分离或推开组织。这种方法适用 于肌肉、皮下结缔组织、筋膜、骨膜和腹膜下间隙等。优点是迅速省时，且不致误伤血管和神经。但 不应粗暴勉强进行，否则造成重要血管和神经的撕裂或器械穿过邻近的空腔脏器或组织，将导致严重 后果。 锐性切开和钝性分离各有优点，在手术过程中可以根据具体情况，选择使用。总的目的是充分 显露深部组织和器官，同时又不致造成过多组织的损伤。为此，必须注意确定准确切开的部位，控制 切口大小以满足实验需要为度，切开时按解剖层次分层进行等。 2止血在手术过程中，组织的切开、切除等都可造成不同程度的出血。因此，在手术操作中， 完善而彻底地止血，不但能防止严重的失血，而且能保证术部清晰，便于手术顺利地进行，避免损伤 重要的器官，有利于切口的愈合。 小血管出血或静脉渗血，可使用纱布或干棉球压迫止血法，是按压，不可擦拭，以免损伤组织 和使血栓脱落。若未能确切止血，用此法也可清除术部血液，辨清组织及出血点以进行其他有效的止 血方法。较大的出血，特别是小动脉出血时，先用止血钳准确夹闭血管断端，结扎后除去止血钳。较 大的血管应尽量避开，或先作双重结扎后剪断。 3.颈部分离血管神经将麻醉好的家兔仰卧保定在手术台上。剪去颈部被毛，于甲状软骨下方 7
7 结扎止血、组织缝合都应使术者感到“得心应手”，如果不能很好地同术者配合，将影响手术进行。 器械助手：负责器械、术中负责传递器械、纱布及准备缝针、缝线。术后做好清理工作。 麻醉助手：除努力做到术中麻醉平稳和安全外，并负责对实验动物的全身检查、并作好记录。 监测动物生理状况，有特殊情况及时报告术者，做好急救工作。 保定助手：负责动物的保定，注意人畜安全；协助麻醉助手。 凡参加手术的人员应分工明确，密切协作，同心协力，确保手术顺利完成。 实验完成后，要及时处理动物。急性实验后处死动物，要考虑简便快速的方法，以减轻动物挣 扎的痛苦。可根据动物大小选择采用颈椎脱臼法（如小鼠）、空气栓塞法（如兔）、打击法、急性大 量放血法、药物致死法和断头法等。 五．基本生理手术操作 虽然生理手术的种类多样，手术的范围、大小和复杂程度也有很大的不同，但手术的基本操作， 如组织分离、止血、打结和缝合的技术是基本相同的。因此，掌握手术基本操作技术是做好一切手术 的基础。在学习生理手术过程中，必须认真作好基本功的训练，做到正确、熟练地掌握基本操作，才 能逐步做到动作稳健、敏捷、准确、轻柔，缩短手术时间，提高手术的效率和成功率。 1.组织分离 组织分离包括使用带刃器械（刀、剪）作锐性切开和使用止血钳、手术刀柄或手 指等作钝性分离。 钝性分离是将有关器械或手指插入组织间隙内，用适当的力量分离或推开组织。这种方法适用 于肌肉、皮下结缔组织、筋膜、骨膜和腹膜下间隙等。优点是迅速省时，且不致误伤血管和神经。但 不应粗暴勉强进行，否则造成重要血管和神经的撕裂或器械穿过邻近的空腔脏器或组织，将导致严重 后果。 锐性切开和钝性分离各有优点，在手术过程中可以根据具体情况，选择使用。总的目的是充分 显露深部组织和器官，同时又不致造成过多组织的损伤。为此，必须注意确定准确切开的部位，控制 切口大小以满足实验需要为度，切开时按解剖层次分层进行等。 2.止血 在手术过程中，组织的切开、切除等都可造成不同程度的出血。因此，在手术操作中， 完善而彻底地止血，不但能防止严重的失血，而且能保证术部清晰，便于手术顺利地进行，避免损伤 重要的器官，有利于切口的愈合。 小血管出血或静脉渗血，可使用纱布或干棉球压迫止血法，是按压，不可擦拭，以免损伤组织 和使血栓脱落。若未能确切止血，用此法也可清除术部血液，辨清组织及出血点以进行其他有效的止 血方法。较大的出血，特别是小动脉出血时，先用止血钳准确夹闭血管断端，结扎后除去止血钳。较 大的血管应尽量避开，或先作双重结扎后剪断。 3.颈部分离血管神经 将麻醉好的家兔仰卧保定在手术台上。剪去颈部被毛，于甲状软骨下方
纵行剪（切）开皮肤约5m。用止血钳等器械钝性分离皮下组织和肌肉，直至暴露气管。左手拇指和 食指捏住切口缘的皮肤和肌肉，其余三指从皮肤外侧向上顶，右手持玻璃分针。在气管一侧找到颈部 血管神经束，粗壮搏动的是颈动脉，与颈动脉伴行的神经中最细的为降压神经（又称主动脉神经）， 最粗的为迷走神经，交感神经居中。辨认清楚后，才能分离，避免先分离搞乱位置后使神经与筋膜 难以辨认。分离时根据需要先将较细的神经分离出来，再分离其它神经和血管，并随即在各血管神 经下穿埋粗细颜色不同的丝线以标记。在类似的分离操作中，尽量避免用金属器械刺激神经，更要防 止刃器或带齿的器械损伤血管神经，多用烧制好的玻璃分针或玻璃钩顺血管神经的走向剥离。 4.插管术 动物插管是为了保证动物的正常生理状态而常用的一种处理方法，如为了保证动物的肺通气 通畅，需做气管插管，使动物通过气管插管进行呼吸：为了测定血压或放血：注射、取血、输液等需 采用血管插管。 (1)插管的一般原则：动作要轻，创面要小，尽量避免对周围组织的损伤，减少对动物的伤 害：所有插管要与所在组织扎车，以免脱落：保持所裸露组织的湿润：经常观察插管部位，以防意外 情况出现。 (②)气管插管动物（以家兔为例）暴露、游离出气管，并在气管下穿一较粗的线。用剪刀 或专用电热丝于喉头下2~3cm处的两软骨环之间，横向切开气管前壁约1/3的气管直径，再于切口 上缘向头侧剪开约0.5cm长的纵向切口，整个切口呈”上”。若气管内有分泌物或血液要用小干 棉球拭净。然后一手提起气管下面的缚线，一手将一适当口径的“Y”气管插管斜口朝下，由切口向肺 插入气管腔内，再转动插管使其斜口面朝上，用线博结于套管的分叉处，加以固定 (3)颈动脉插管 事先准备好插管导管，取适当长度的塑料管或硅胶管，插入端剪一斜面 另一端连接于装有抗凝溶液（或生理盐水）的血压换能器或输液装置上，让导管内充满溶液。 给动物静脉注射肝素(500U/kg),使全身肝素化（他可不进行此操作），分离出一段颈总动脉，在其下 穿两根线备用。将动脉远心端的线结扎，用动脉夹夹住近心端，两端间的距离尽可能长。用眼科剪在 靠远心端结扎线处的动脉上呈45°度剪一小口，约为管径的1/3或1/2，向心脏方向插入动脉导管， 用近心端的备用线，在插入口处将导管与血管结扎在一起，其松紧以开放动脉夹后不致出血为度。小 心缓慢放开动脉夹，如有出血，即将线再扎紧些，但仍以导管能抽动为宜。将导管再送入2~3cm, 并使结扎更紧些，以使导管不致脱落。用远心处的备用线围绕导管打结、固定。操作完毕后将血管放 回原处。 5.腹壁切开法腹中线切口适用于兔的腹部实验手术。不管是前中部，还是中后部腹中线切口， 通路手术所经过的组织层次基本相同。将动物在手术台上仰卧保定，可作全身麻醉配合局部浸润麻醉。 腹部正中线剪毛，助手将腹部皮肤左右提起，术者用手术剪（或刀）纵向剪一小口，再水平插入剪刀， 剪刀尖上挑式剪开腹中线皮肤。此时皮下可见一纵向腹白线，如皮肤同样先剪一小口，再用纯头外科
8 纵行剪（切）开皮肤约 5cm。用止血钳等器械钝性分离皮下组织和肌肉，直至暴露气管。左手拇指和 食指捏住切口缘的皮肤和肌肉，其余三指从皮肤外侧向上顶，右手持玻璃分针。在气管一侧找到颈部 血管神经束，粗壮搏动的是颈动脉，与颈动脉伴行的神经中最细的为降压神经（又称主动脉神经）， 最粗的为迷走神经，交感神经居中。辨认 清楚后，才能分离，避免先分离搞乱位置后使神经与筋膜 难以辨认。分离时根据需要先将较 细的神经分离出来，再分离其它神经和血管，并随即在各血管神 经下穿埋粗细颜色不同的丝线以标记。在类似的分离操作中，尽量避免用金属器械刺激神经，更要防 止刃器或带齿的器械损伤血管神经，多用烧制好的玻璃分针或玻璃钩顺血管神经的走向剥离。 4.插管术 动物插管是为了保证动物的正常生理状态而常用的一种处理方法，如为了保证动物的肺通气 通畅，需做气管插管，使动物通过气管插管进行呼吸；为了测定血压或放血；注射、取血、输液等需 采用血管插管。 (1)插管的一般原则： 动作要轻，创面要小，尽量避免对周围组织的损伤，减少对动物的伤 害；所有插管要与所在组织扎牢，以免脱落；保持所裸露组织的湿润；经常观察插管部位，以防意外 情况出现。 (2)气管插管 动物（以家兔为例）暴露、游离出气管，并在气管下穿一较粗的线。用剪刀 或专用电热丝于喉头下 2～3 cm 处的两软骨环之间，横向切开气管前壁约 1/3 的气管直径，再于切口 上缘向头侧剪开约 0.5 cm 长的纵向切口，整个切口呈”┴” 。若气管内有分泌物或血液要用小干 棉球拭净。然后一手提起气管下面的缚线，一手将一适当口径的“Y”气管插管斜口朝下,由切口向肺 插入气管腔内，再转动插管使其斜口面朝上，用线镈结于套管的分叉处,加以固定 (3)颈动脉插管 事先准备好插管导管，取适当长度的塑料管或硅胶管，插入端剪一斜面， 另一端连接于装有抗凝溶液（或生理盐水）的血压换能器或输液装置上，让导管内充满溶液。 给动物静脉注射肝素（500 U/kg），使全身肝素化(也可不进行此操作),分离出一段颈总动脉，在其下 穿两根线备用。将动脉远心端的线结扎，用动脉夹夹住近心端，两端间的距离尽可能长。用眼科剪在 靠远心端结扎线处的动脉上呈 45º 度剪一小口，约为管径的 1/3 或 1/2，向心脏方向插入动脉导管， 用近心端的备用线，在插入口处将导管与血管结扎在一起，其松紧以开放动脉夹后不致出血为度。小 心缓慢放开动脉夹，如有出血，即将线再扎紧些，但仍以导管能抽动为宜。将导管再送入 2～3 cm， 并使结扎更紧些,以使导管不致脱落。用远心处的备用线围绕导管打结、固定。操作完毕后将血管放 回原处。 5.腹壁切开法 腹中线切口适用于兔的腹部实验手术。不管是前中部，还是中后部腹中线切口， 通路手术所经过的组织层次基本相同。将动物在手术台上仰卧保定，可作全身麻醉配合局部浸润麻醉。 腹部正中线剪毛，助手将腹部皮肤左右提起，术者用手术剪（或刀）纵向剪一小口，再水平插入剪刀， 剪刀尖上挑式剪开腹中线皮肤。此时皮下可见一纵向腹白线，如皮肤同样先剪一小口，再用钝头外科
剪（腹膜剪）或伸入手指垫者，沿腹白线打开腹腔，以免伤及脏器。 第三节计算机生物信号采集处理系统 基础医学实验手段和设备的不断更新，促进了机能学实验研究的发展。计算机是一种现代化、 高科技的自动信息分析、处理设备。利用计算机采集、处理生物信息，让计算机进入机能学实验室 已成为必然趋势。 一、计算机在机能学实验中的应用 一)计算机应用的一般过程通常人们把电子的、机械的以及磁性的各种部件所组成的计算 机实体称为硬件，如输入设备、中央处理器(CPU)、内存储器、外存储器、输出设备等。而把指挥 计算机工作的各种程序和数据称为“软件”。 在实际使用时，首先从输入设备键盘、鼠标、磁盘将程序及数据送入内存，再输入让程序运行 的命令，这时中央处理器就按照内存中程序的安排，从中取出数据到运算器内进行运算、处理，并 将结果送回内存中保存。同时将运行的结果按照要求通过输出设备显示、打印出来，也可以送到磁 盘上储存起来。由此可见，计算机是按照人们的要求来完成程序规定的任务。 二)生物信总的采集、处理过程计算机采集、处理生物信总的一般过程如图20。 数据分析、处理 →换能器 →显示 生物体+电信号→放大器→A/D转换器一计算机 储存 打印等 二BL-420生物机能实验系统介绍 一)BL-420生物机能实验系统功能特点 1.采用12位AD转换器，最高采样速率可达60kz。 2,四通道高增益(2一50000倍)，低噪声，程控的生物电放大器。各通道扫描速度分别可调， 3.程控电刺激器，包括电压输出(ON~35V,步长最小达5mV)和电流输出(0mA~10mA, 步长最小达1μ)两种模式。 4,程控全导联心电选择 5.以中文win98为软件平台，全中文图形化操作界面。 6。网络控制功能，可实现教师与学生在计算机上直接对话。 7,以生理实验为基础，预设置了8个系统共32个实验模块」 8。独特的双视显示功能，可实现实时实验生物波形与实验记录波形同时对比观察的功能
9 剪（腹膜剪）或伸入手指垫着，沿腹白线打开腹腔，以免伤及脏器。 第三节 计算机生物信号采集处理系统 基础医学实验手段和设备的不断更新，促进了机能学实验研究的发展。计算机是一种现代化、 高科技的自动信息分析、处理设备。利用计算机采集、处理生物信息，让计算机进入机能学实验室 已成为必然趋势。 一、计算机在机能学实验中的应用 一） 计算机应用的一般过程 通常人们把电子的、机械的以及磁性的各种部件所组成的计算 机实体称为硬件，如输入设备、中央处理器(CPU)、内存储器、外存储器、输出设备等。而把指挥 计算机工作的各种程序和数据称为“软件”。 在实际使用时，首先从输入设备键盘、鼠标、磁盘将程序及数据送入内存，再输入让程序运行 的命令，这时中央处理器就按照内存中程序的安排，从中取出数据到运算器内进行运算、处理，并 将结果送回内存中保存。同时将运行的结果按照要求通过输出设备显示、打印出来，也可以送到磁 盘上储存起来。由此可见，计算机是按照人们的要求来完成程序规定的任务。 二） 生物信息的采集、处理过程 计算机采集、处理生物信息的一般过程如图 20。 数据分析、处理 换能器 显示 生物体 电信号 放大器 A/D 转换器 计算机 储存 打印 等 二 BL-420 生物机能实验系统介绍 一 ）BL-420 生物机能实验系统功能特点 1．采用 12 位 A/D 转换器，最高采样速率可达 60 kHz。 2．四通道高增益(2～50 000 倍)，低噪声，程控的生物电放大器。各通道扫描速度分别可调。 3．程控电刺激器，包括电压输出(0V～35V，步长最小达 5mV)和电流输出(0 mA～10 mA， 步长最小达 1μA)两种模式。 4．程控全导联心电选择。 5．以中文 win98 为软件平台，全中文图形化操作界面。 6．网络控制功能，可实现教师与学生在计算机上直接对话。 7．以生理实验为基础，预设置了 8 个系统共 32 个实验模块。 8．独特的双视显示功能，可实现实时实验生物波形与实验记录波形同时对比观察的功能
9.数据分析功能，可实时地对原始生物信号以及储存在磁盘上的反演信号进行积分、微分、频 谱、频率直方等运算、分析：并同步显示该处理后的图形。 10.测量功能对信号进行实时测量、光标测量、两点测量以及区间测量，可测量出多项生物指 标，如：最大、最小以及平均值，信号的频率、面积、变化率以及持续时间等，且可将测量结 果数据或原始数据导出到Excel或txt文件中。 11.数据反演功能，在反演数据过程中，可用鼠标拖动数据查找滚动条进行快速查找：并可对 反演信号进行数据、图形剪辑。 2.有打印单、多通道的实验数据功能：在打印时，还可进行图形比例压缩，确定打印位置。 二)使用指南 1.主界面 标题 工具条 时足示窗口 四个切探细 L左视 培益、标尺调正 显画道之问的分隔条 分时复用区 Mar标过 数易减条及反害按 杆珠实验标选择 BL-NewCentury,exe操作主界面 主界面从上到下依次主要分为：标题条、莱单条、工具条、波形显示窗口、数 据滚动条及反演按钮区、状态条等6个部分。 主界面从左到右主要分为：标尺调节区、波形显示窗口和分时复用区三个部分。波形显示窗口 可以通过鼠标左、右视分隔条，同时显示反演波形和实时观察的生物波形（左视显示实时记录下来 的生物波形，右视显示实时的生物波形)。在标尺调节区的上方是刺激器调节区，其下方则是Mark 标志区。分时复用区包括：控制参数调节区、显示参数调节区、通用信息显示区和专用信息显示区 四个分区，它们分时占用屏幕右边相同的一块显示区域，可以通过分时复用区顶端的4个切换按钮 在这4个不同用途的区域之间进行切换。分时复用区的下方是特殊实验标记选择区。各部分功能
10 9．数据分析功能，可实时地对原始生物信号以及储存在磁盘上的反演信号进行积分、微分、频 谱、频率直方等运算、分析；并同步显示该处理后的图形。 10．测量功能 对信号进行实时测量、光标测量、两点测量以及区间测量，可测量出多项生物指 标，如：最大、最小以及平均值，信号的频率、面积、变化率以及持续时间等 ， 且 可 将 测 量 结 果 数 据 或 原 始 数 据 导 出 到 E x c e l 或 t x t 文件中。 11．数据反演功能，在反演数据过程中，可用鼠标拖动数据查找滚动条进行快速查找；并可对 反演信号进行数据、图形剪辑。 12．有打印单、多通道的实验数据功能；在打印时，还可进行图形比例压缩，确定打印位置。 二 ） 使用指南 1．主界面 主界面从上到 下依次主要分为：标题条、菜单条、工具条、波形显示窗口、数 据滚动条及 反 演 按钮 区 、 状 态 条 等 6 个部分。 主界面从左到右主要分为：标尺调节区、波形显示窗口和分时复用区三个部分。波形显示窗口 可以通过鼠标左、右视分隔条，同时显示反演波形和实时观察的生物波形（左视显示实时记录下来 的生物波形，右视显示实时的生物波形）。在标尺调节区的上方是刺激器调节区，其下方则是 Mark 标志区。分时复用区包括：控制参数调节区、显示参数调节区、通用信息显示区和专用信息显示区 四个分区，它们分时占用屏幕右边相同的一块显示区域，可以通过分时复用区顶端的 4 个切换按钮 在这 4 个不同用途的区域之间进行切换。分时复用区的下方是特殊实验标记选择区。各部分功能 BL-NewCentury.exe 操作主界面
