延安大学：《生理学 Human Physiology》课程教学资源（实验指导）循环实验_实验二十心血管活动的神经体液调节.pdf_大学文库

实验二十心血管活动的神经体液调节目的和原理支配心脏的传出神经为心交感神经和心迷走神经。心交感神经兴奋,其节后纤维末梢释放去甲肾上腺素,作用于心肌细胞膜上的β受体,使心率加快、房室传导加速、心肌收缩力加强、心输出量增加;心迷走神经兴奋,其节后纤维末梢释放乙酰胆碱,作用于心肌细胞膜上的M受体,使心率减慢、房室传导减慢、心肌收缩力减弱、心输出量减少。绝大多数的血管都受交感缩血管神经纤维的单一支配,当其兴奋时,血管平滑肌收缩,血管口径缩小,外周阻力增加。神经系统对心血管活动的调节是通过各种反射活动来实现的,其中最重要的是颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射心血管活动除受神经调节外,还受体液因素的调节,其中最主要的为肾上腺素和去甲肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性,又有特殊性。肾上腺素对α及β受体均能激活,它对心脏的作用,主要是通过β受体,使心跳加快,兴奋传导加速,心肌收缩力加强,因而使心输出量增加;它对血管的作用,则取决于血管平滑肌上α、β两种受体分布的情况。去甲肾上腺素主要是激活α受体,对β受体的作用较小,因而其主要作用是使外周阻力增加,而强心作用远较肾上腺素弱。在整体动物,静脉注射去甲肾上腺素,可使全身血管广泛收缩,动脉血压升髙;血压升髙又使压力感受性反射活动加强,由于压力感受性反射对心脏的效应超过了去甲肾上腺素对心脏的直接效应,故心率减慢。刺激支配心脏及血管的传出神经、改变压力感受性反射的某些环节、注射作用于心血管的神经递质及激素等,可引起心血管活动发生改变,后者又导致动脉血压发生相应的改变。因此,在实验中,除了直接观察心率、心肌收缩力、搏出量、血管口径等反映心血管活动的指标外,也可以从动脉血压的变化间接了解心血管活动的变化本实验的目的是:(1)以动脉血压和心率的变化为指标,观察心血管活动的神经体液性调节。 (2)学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法。(3)了解哺乳动物急性实验的技术二、实验对象家兔三、器材和用品狗兔两用台、哺乳动物手术器械、生物信号采集处理系统、压力换能器、塑料动脉插管、张力换能器(测力应小)、试管夹、双凹夹、铁支架、毫针(长4cm)、动脉夹、三通管、电刺激器、保护电极、气管插管、注射器(lml、5ml、10ml、30m1)、有色丝线、纱布、照明灯。 20%氨基甲酸乙酯、10-肾上腺素、10-5乙酰胆碱、0.4%肝素、生理盐水四、方法与步骤 1.连接实验装置将压力换能器用试管夹固定于铁支架上,并使其位置大致与心脏在同一平面,压力换能器的输出与生物信号采集处理系统的通道2接口相连,在压力换能器另一端的两个孔嘴(压力传送嘴和液体注入嘴)上各接一个三通管,在压力传送嘴上通过三通管再与塑料动脉插管相连(连接必须紧密,不

实验二十心血管活动的神经体液调节一、目的和原理支配心脏的传出神经为心交感神经和心迷走神经。心交感神经兴奋，其节后纤维末梢释放去甲肾上腺素，作用于心肌细胞膜上的β受体，使心率加快、房室传导加速、心肌收缩力加强、心输出量增加；心迷走神经兴奋，其节后纤维末梢释放乙酰胆碱，作用于心肌细胞膜上的Ｍ受体，使心率减慢、房室传导减慢、心肌收缩力减弱、心输出量减少。绝大多数的血管都受交感缩血管神经纤维的单一支配，当其兴奋时，血管平滑肌收缩，血管口径缩小，外周阻力增加。神经系统对心血管活动的调节是通过各种反射活动来实现的，其中最重要的是颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射。心血管活动除受神经调节外，还受体液因素的调节，其中最主要的为肾上腺素和去甲肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。肾上腺素对α及β受体均能激活，它对心脏的作用，主要是通过β受体，使心跳加快，兴奋传导加速，心肌收缩力加强，因而使心输出量增加；它对血管的作用，则取决于血管平滑肌上α、β两种受体分布的情况。去甲肾上腺素主要是激活α受体，对β受体的作用较小，因而其主要作用是使外周阻力增加，而强心作用远较肾上腺素弱。在整体动物，静脉注射去甲肾上腺素，可使全身血管广泛收缩，动脉血压升高；血压升高又使压力感受性反射活动加强，由于压力感受性反射对心脏的效应超过了去甲肾上腺素对心脏的直接效应，故心率减慢。刺激支配心脏及血管的传出神经、改变压力感受性反射的某些环节、注射作用于心血管的神经递质及激素等，可引起心血管活动发生改变，后者又导致动脉血压发生相应的改变。因此，在实验中，除了直接观察心率、心肌收缩力、搏出量、血管口径等反映心血管活动的指标外，也可以从动脉血压的变化间接了解心血管活动的变化。本实验的目的是：(1)以动脉血压和心率的变化为指标，观察心血管活动的神经体液性调节。 (2)学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法。(3)了解哺乳动物急性实验的技术。二、实验对象家兔三、器材和用品狗兔两用台、哺乳动物手术器械、生物信号采集处理系统、压力换能器、塑料动脉插管、张力换能器（测力应小）、试管夹、双凹夹、铁支架、毫针（长4cm）、动脉夹、三通管、电刺激器、保护电极、气管插管、注射器（1ml、5ml、10ml、30ml）、有色丝线、纱布、照明灯。 20％氨基甲酸乙酯、10-4肾上腺素、10-5乙酰胆碱、0.4％肝素、生理盐水。四、方法与步骤 1．连接实验装置将压力换能器用试管夹固定于铁支架上，并使其位置大致与心脏在同一平面，压力换能器的输出与生物信号采集处理系统的通道2接口相连，在压力换能器另一端的两个孔嘴（压力传送嘴和液体注入嘴）上各接一个三通管，在压力传送嘴上通过三通管再与塑料动脉插管相连（连接必须紧密，不

能有任何渗漏)。在动脉插管插入颈总动脉之前,通过液体注λ嘴的三通管用注射器将肝素溶液注满血压换能器的压力仓和动脉插管,并排出所有气泡,然后关闭三通管。将刺激电极插头与刺激器接口相连图(20-1)。选择“实验项目”菜单中的“循环实验”菜单项,以弹岀“循环实验”子菜单。在“循环实验”子菜单中选择“兔动脉血压调节”实验模块。放开动脉夹,记录动脉血压。根据信号窗口中显示的波形,再适当调节实验参数以获得最佳的实验效果。机械一电换能器连至心脏上的毫针换能器向心插入颈总动脉图20-1记录动脉血压和心率的装置示意图 2.手术准备 ()麻醉并固定动物:按lg/kg的剂量由耳缘静脉缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液将动物麻醉。将动物仰卧于兔台上,固定好头和四肢。注意颈部必须放正拉直。 (2)气管插管:剪去颈部的毛,沿颈部正中线作一5~7厘米的皮肤切口,钝性分开皮下组织和肌肉,暴露气管。在气管下穿一丝线并提起气管(穿线时应注意将气管与血管和神经及食管分开) 用剪刀或手术刀在环状软骨下作一倒“T”形切口,将气管插管自切口处向肺脏方向插入,然后用丝线扎紧,并用结扎线绕过气管插管的分叉处再打一结,以防滑出。 (3分离颈部神经和血管:将气管两旁的肌肉拉开,在气管的两侧深部便可找到包在颈动脉鞘内的颈总动脉、迷走神经、颈交感神经和减压神经。用左手从颈后皮肤外,把右侧颈部组织向上顶起, 小心打开颈动脉鞘,仔细识别三条神经,其中迷走神经最粗最白,交感神经较细,减压神经最细, 常常与交感神经紧贴在一起(图20-2)。一般先分离颈总动脉及迷走神经,然后分离减压神经和交感神经(注意:应先认清,再分离)。分离清楚后,在各条神经及颈总动脉下分别穿一有色丝线备用(注意:勿过度牵拉而使神经受损)。以同样方法分离左侧颈总动脉,并在其下穿两根丝线,作结扎和固定动脉插管用

能有任何渗漏）。在动脉插管插入颈总动脉之前，通过液体注入嘴的三通管用注射器将肝素溶液注满血压换能器的压力仓和动脉插管，并排出所有气泡，然后关闭三通管。将刺激电极插头与刺激器接口相连图（20-1）。选择“实验项目”菜单中的“循环实验”菜单项，以弹出“循环实验”子菜单。在“循环实验” 子菜单中选择“兔动脉血压调节”实验模块。放开动脉夹，记录动脉血压。根据信号窗口中显示的波形，再适当调节实验参数以获得最佳的实验效果。图20-1 记录动脉血压和心率的装置示意图 2．手术准备 ⑴麻醉并固定动物：按1g/kg的剂量由耳缘静脉缓慢注入20 ％氨基甲酸乙酯溶液将动物麻醉。将动物仰卧于兔台上，固定好头和四肢。注意颈部必须放正拉直。 ⑵气管插管：剪去颈部的毛，沿颈部正中线作一5～7厘米的皮肤切口，钝性分开皮下组织和肌肉，暴露气管。在气管下穿一丝线并提起气管（穿线时应注意将气管与血管和神经及食管分开），用剪刀或手术刀在环状软骨下作一倒“Ｔ”形切口，将气管插管自切口处向肺脏方向插入，然后用丝线扎紧，并用结扎线绕过气管插管的分叉处再打一结，以防滑出。 ⑶分离颈部神经和血管：将气管两旁的肌肉拉开，在气管的两侧深部便可找到包在颈动脉鞘内的颈总动脉、迷走神经、颈交感神经和减压神经。用左手从颈后皮肤外，把右侧颈部组织向上顶起，小心打开颈动脉鞘，仔细识别三条神经，其中迷走神经最粗最白，交感神经较细，减压神经最细，常常与交感神经紧贴在一起（图20-2）。一般先分离颈总动脉及迷走神经，然后分离减压神经和交感神经（注意：应先认清，再分离）。分离清楚后，在各条神经及颈总动脉下分别穿一有色丝线备用（注意：勿过度牵拉而使神经受损）。以同样方法分离左侧颈总动脉，并在其下穿两根丝线，作结扎和固定动脉插管用

延安大学：《生理学 Human Physiology》课程教学资源（实验指导）循环实验_实验二十 心血管活动的神经体液调节

延安大学：《生理学 Human Physiology》课程教学资源（实验指导）循环实验_实验二十心血管活动的神经体液调节