鸭坦布苏病毒E蛋白基因的原核表达、纯化及初步鉴定.doc_大学文库

鸭坦布苏病毒E蛋白基因的原核表达姬希文1,2,李雪松1,边延峰3,李国新1,颜丕不熙,张七斤2,李泽君 (1.中国农业科学院上海兽医研究所,上海200241;2内蒙古农业大学兽医学院,呼和浩特 010018;3.天津生机集团股份有限公司,天津300384) 摘要:本硏究利用 RI-PCR方法扩增鸭坦布苏病毒( Duck Tembusu virus, DTMUV)奉贤株(FX2010)的结构蛋白 E基因,并将其克隆至原核表达载体pI32a(+),构建重组表达质粒pEI32a-E。将其转化受体菌 Ecoli bl2lODE3) 感受态细胞,经IPTG诱导进行表达。 SDS-PAGE和 Western blot试验检测结果表明,E基因在大肠杆菌中得到了表达,并且可与抗 DTMUV的多克隆抗体发生特异性反应。E基因的成功表达为 DTMUV的诊断试剂盒、疫苗等的研制奠定基础关键词:鸭坦布苏病毒;E基因;克隆;表达中图分类号文献标志码:A 文章编号:16746422(2012)02-00000 EXPRESSION OFE PROTEIN OF DUCK TEMBUSU VIRUS IN PROKARYOTIC CELLS JI Xi-wen, 2, LI Xue-song, BIAN Yan-feng, LI Guo-xin, YAN Pi-xil, ZHANG Qi- jin, LI Ze-jun (1. Shanghai Veterinary Research Institute, CAAS, Shanghai200241, China; 2. College of veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University: Hohhot 010018, China; 3. Tianjin Shengji Group Co, Ltd, Tianjin 300384, China) Abstract: The e gene of duck Tembusu virus(DTMUV) was amplified by rT-PCr and inser ted into the multiple clone sites of the pET32a(+) vector. The recomb inant plasmid was transformed into BL21(DE3) competent cells and the cells were induced with IPTG to express the e protein. SDS-PAGe and Western blot assays showed that he e prote in was successfully expressed and kept the activ ity for binding the dtmUv-specific antibody based on e protein expressed in prokaryotic cells, it might become easy to develop diagnosis kits and vaccines for DTMUV Key words: Duck tembusu virus; E gene, cloning: expression 自2010年春季以来,中国华东地区发生了以产蛋下降和死亡为主要特征的鸭病的流行,之后该病迅速传播全国多个省市,到目前为止,全国大部分主要水禽养殖地区仍然受到该病的威胁,发病率高达100%,病死率在5%~10%之间。经过病毒分离鉴定,目前已经确定引起该病的病原为鸭坦布苏病毒( Duck tembusu virus, DTMUV)。DIMUⅤ属黄病毒科黄病毒属凹,呈球型,直径30~50 nm,核心含单股RNA,有衣壳。从序列上分析,该病毒可能与其他黄病毒属的病毒一样,具有3 结构蛋白,即E蛋白、核蛋白和白蛋白为糖蛋白。其中,E蛋白是诱发动物机体产生抗日本乙脑病毒中和抗体的重要抗原,黄病毒属中多数病毒的E蛋白与机体宿主的免疫应答作用密切相关,能刺激机体产生中和抗体和血凝抑制抗体45,诱导机体产生持久T记忆细胞,引起保护性免疫反应收稿日期:2012-02-23 基金项目:公益性行业(农业)专项经费(201003012):国家国际科技合作项目(2010DFB3920);中国农业科学院上海兽医研究所中央级公益性科研院所基本科研业务费专项资金项目(2010JB04) 作者简介:姬希文,女,硕士研究生,预防兽医学专业通信作者:李泽君, E-mail: liejun @shari.accn

鸭坦布苏病毒 E 蛋白基因的原核表达姬希文 1, 2，李雪松 1，边延峰 3，李国新 1，颜丕熙 1，张七斤 2，李泽君 1 (1.中国农业科学院上海兽医研究所，上海 200241； 2.内蒙古农业大学兽医学院，呼和浩特 010018；3.天津生机集团股份有限公司，天津 300384）摘要：本研究利用 RT-PCR 方法扩增鸭坦布苏病毒（Duck Tembusu virus，DTMUV）奉贤株（FX2010）的结构蛋白 E 基因，并将其克隆至原核表达载体 pET32a（+），构建重组表达质粒 pET32a-E。将其转化受体菌 E.coli BL21(DE3) 感受态细胞，经 IPTG 诱导进行表达。SDS-PAGE 和 Western blot 试验检测结果表明，E 基因在大肠杆菌中得到了表达，并且可与抗 DTMUV 的多克隆抗体发生特异性反应。E 基因的成功表达为 DTMUV 的诊断试剂盒、疫苗等的研制奠定基础。关键词：鸭坦布苏病毒；E 基因；克隆；表达中图分类号：文献标志码：A 文章编号：1674-6422（2012）02-0000-00 EXPRESSION OF E PROTEIN OF DUCK TEMBUSU VIRUS IN PROKARYOTIC CELLS JI Xi-wen1, 2，LI Xue-song 1，BIAN Yan-feng3，LI Guo-xin1，YAN Pi-xi1，ZHANG Qi-jin2，LI Ze-jun1 （1.Shanghai Veterinary Research Institute, CAAS, Shanghai200241,China; 2.College of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018,China; 3.Tianjin Shengji Group Co., Ltd., Tianjin 300384, China） Abstract: The E gene of duck Tembusu virus (DTMUV) was amplified by RT-PCR and inserted into the multiple clone sites of the pET32a(+) vector. The recombinant plasmid was transformed into BL21(DE3) competent cells and the cells were induced with IPTG to express the E protein. SDS-PAGE and Western Blot assays showed that he E protein was successfully expressed and kept the activity for binding the DTMUV-specific antibody. Based on E protein expressed in prokaryotic cells, it might become easy to develop diagnosis kits and vaccines for DTMUV. Key words: Duck tembusu virus; E gene; cloning; expression 自 2010 年春季以来，中国华东地区发生了以产蛋下降和死亡为主要特征的鸭病的流行，之后该病迅速传播全国多个省市，到目前为止，全国大部分主要水禽养殖地区仍然受到该病的威胁，发病率高达 100%，病死率在 5%~10%之间。经过病毒分离鉴定，目前已经确定引起该病的病原为鸭坦布苏病毒（Duck tembusu virus , DTMUV）[1]。DTMUV 属黄病毒科黄病毒属[2]，呈球型，直径 30～50 nm，核心含单股 RNA，有衣壳。从序列上分析，该病毒可能与其他黄病毒属的病毒一样，具有 3 结构蛋白，即 E 蛋白、核蛋白和白蛋白为糖蛋白。其中，E 蛋白是诱发动物机体产生抗日本乙脑病毒中和抗体的重要抗原[3] ，黄病毒属中多数病毒的 E 蛋白与机体宿主的免疫应答作用密切相关，能刺激机体产生中和抗体和血凝抑制抗体[4,5]，诱导机体产生持久 T 记忆细胞，引起保护性免疫反应。收稿日期：2012-02-23 基金项目：公益性行业(农业)专项经费(201003012)；国家国际科技合作项目（2010DFB33920）；中国农业科学院上海兽医研究所中央级公益性科研院所基本科研业务费专项资金项目（2010JB04）作者简介：姬希文，女，硕士研究生，预防兽医学专业通信作者：李泽君，E-mail：lizejun@shvri.ac.cn

E蛋白在病毒致病过程中也起关键性作用,该蛋白上一些关键的氨基酸的替代即可引起神经毒力和侵袭力的丧失。此外,E基因还与病毒吸附、侵入宿主细胞有关。本研究首次表达和纯化了具有生物学活性的 DTMUV E蛋白,为DIMUⅤ早期诊断试剂盒、疫苗与E蛋白结构功能研究奠定了基础 1材料和方法 11质粒、菌种及试剂pET32a(+)表达载体和JM109、BL21(DE3)宿主菌为本试验室保存;限制性内切酶、和T4DNA连接酶为NEB公司;pMD9-T、 Ex Taq dna聚合酶、MMV逆转录酶购自 TaKaRa公司;鼠源多克隆抗体由本实验室制备;HRP标记羊抗鼠lgG为KPL公 12引物设计根据 DTMUV奉贤株(FX2010)E基因序列( Gen Bank:HQ8333.1),利用 primers 软件设计一对E基因的特异性引物,预扩增片段长大约1500bp,由上海英骏生物技术有限公司合成, 其序列如下: DTMUV-ECOR I-UP(上游引物):5 CACACGAATTCCGAGACTTTGTTGAGGGAG TGAAT3 DTMUV-XhO L-DOWN(下游引物):5- CACACCTCGAGGACATGGATATGGGAACTCTACA-3 13DTMUⅤE基因片段的PCR扩增以提取的DⅠMUV奉贤株RNA为模板,反转录合成cDNA, 以cDNA为模板进行PCR,操作方法和反应条件如下:以5μLRNA为模板,2 uL Random( TaKaRa 公司)为引物,70℃保温10min,迅速冰浴2min,然后分别加入4μL5× M-MLVbuffer1μLRRl、 1μ LM-MLV( TaKaRa公司)、1μL1 mmol/L dNTP、6μ L DEPC水,共20μ,混匀后30℃保温 10min,42℃水浴1min,75℃10min:;将得到的产物进行PCR扩增,反应条件:94℃预变性5min; 94℃变性50s,53℃退火1min;72℃延伸1min30s,30个循环;72℃再延伸15min,10g/L琼脂糖凝胶电泳分析扩增产物,回收目的片段 14目的基因的克魔与鉴定将回收的PCR产物克隆入pMD9-T载体上,连接反应体系为: pMD9-T1μL、目的DNA片段4山L和 Solution I.5μL;16℃连接2h后,转化E. coli jm109感受态细胞,涂布于含IPIG和Xgal的氨苄平板上,37℃恒温培养12-16h,挑取单个白色菌落接种于含氨苄的液体培养基中,37℃2)0rmin振荡培养,提取质粒DNA,经 EcoR I和MhoⅠ双酶切鉴定正确后,将阳性克隆送上海英俊公司测序 1.5重组原核表达载体的构建与鉴定将测序正确的pMDl9TE阳性质粒和原核表达载体pET32a (+)分别用 ECoR I和MhoI双酶切,分别回收酶切后目的片段与线性化后的pET32a(+),加入 T4-DNA连接酶于16℃连接过夜,并将连接产物转化 Ecoli bl21感受态细胞;挑取单菌落进行 PCR、酶切鉴定。 2结果 21PCR扩增 DTMUV E基因的PCR扩增产物电泳后可见一条约1500bp的条带,与预期片段大小相符(图1),并且测序结果与目的序列一致

E 蛋白在病毒致病过程中也起关键性作用，该蛋白上一些关键的氨基酸的替代即可引起神经毒力和侵袭力的丧失[3]。此外，E 基因还与病毒吸附、侵入宿主细胞有关。本研究首次表达和纯化了具有生物学活性的 DTMUV E 蛋白，为 DTMUV 早期诊断试剂盒、疫苗与 E 蛋白结构功能研究奠定了基础。 1 材料和方法 1.1 质粒、菌种及试剂 pET32a（+）表达载体和 JM109、BL21(DE3)宿主菌为本试验室保存；限制性内切酶、和 T4 DNA 连接酶为 NEB 公司；pMD19-T、Ex Taq DNA 聚合酶、M-MLV 逆转录酶购自 TaKaRa 公司；鼠源多克隆抗体由本实验室制备；HRP 标记羊抗鼠 IgG 为 KPL 公司。 1.2 引物设计根据 DTMUV 奉贤株（FX2010）E 基因序列（GenBank: HQ833330.1），利用 primer5 软件设计一对 E 基因的特异性引物，预扩增片段长大约 1500 bp，由上海英骏生物技术有限公司合成，其序列如下： DTMUV-EcoR I-UP（上游引物）:5'-CACACGAATTCCGAGACTTTGTTGAGGGAGTGAAT- 3' DTMUV-Xho I-DOWN（下游引物）: 5'-CACACCTCGAGGACATGGATATGGGAACTCTACA -3' 1.3 DTMUV E 基因片段的 PCR 扩增以提取的 DTMUV 奉贤株 RNA 为模板，反转录合成 cDNA，以 cDNA 为模板进行 PCR，操作方法和反应条件如下：以 5 μL RNA 为模板，2 μL Random（TaKaRa 公司）为引物，70 ℃保温 10 min，迅速冰浴 2 min，然后分别加入 4 μL 5×M-MLVbuffer、1 μL RRI、 1 μL M-MLV（TaKaRa 公司）、１μL 10mmol/L dNTP、６μL DEPC 水，共 20 μL，混匀后 30℃保温 10 min， 42℃水浴１min，75℃10 min；将得到的产物进行 PCR 扩增，反应条件：94℃预变性 5 min； 94℃变性 50 s，53℃退火 1 min；72℃延伸 1 min 30 s，30 个循环；72℃ 再延伸 15 min，10 g/L 琼脂糖凝胶电泳分析扩增产物，回收目的片段。 1.4 目的基因的克隆与鉴定将回收的 PCR 产物克隆入 pMD19-T 载体上，连接反应体系为： pMD19-T 1 μL、目的 DNA 片段 4 μL 和 Solution I 5 μL；16℃连接 2 h 后，转化 E. coli JM109 感受态细胞，涂布于含 IPTG 和 X-gal 的氨苄平板上，37℃恒温培养 12~16 h，挑取单个白色菌落接种于含氨苄的液体培养基中，37 ℃ 220 r/min 振荡培养，提取质粒 DNA，经 EcoRⅠ和 XhoⅠ双酶切鉴定正确后，将阳性克隆送上海英俊公司测序。 1.5 重组原核表达载体的构建与鉴定将测序正确的 pMD19T-E 阳性质粒和原核表达载体 pET32a （+）分别用 EcoRⅠ和 XhoⅠ双酶切，分别回收酶切后目的片段与线性化后的 pET-32a（+），加入 T4-DNA 连接酶于 16℃连接过夜，并将连接产物转化 E.coli BL21 感受态细胞；挑取单菌落进行 PCR、酶切鉴定。 2 结果 2.1 PCR 扩增 DTMUV E 基因的 PCR 扩增产物电泳后可见一条约 1500 bp 的条带，与预期片段大小相符（图 1），并且测序结果与目的序列一致

的主要成分,它可激发中和抗体和保护性免疫,一般认为它是病毒受体的结合蛋白,并介导膜融合和细胞穿入本研究利用PCR技术扩增出了 DIMUV完整E蛋白基因片段,含有形成高级结构所需的所有元件。为了分析原核表达的E蛋白的生物学特性,建立安全、简便和经济的制备 DTMUV诊断抗原的方法,笔者构建了 DIMUV-E表达载体,并在大肠杆菌中表达。由于大肠杆菌表达菌株BL21 (DE3 pLysS+)的转化效率相对较低,所以按pET系列载体克隆操作说明的方法,先把目的基因和载体的连接产物克隆入大肠杆菌JMI09中,筛选出重组质粒后,再把重组质粒转化表达菌株BL21 (DE3),最后成功地在大肠杆菌中表达了E蛋白 DTMUV的E蛋白在病毒与敏感细胞结合过程中起着重要的作用, DTMUV敏感细胞表面有病毒的相应受体,但其结构和功能尚未明确。我们用原核表达系统表达E蛋白,在多次尝试不同表达载体与宿主菌之后,成功的构建了E蛋白的原核表达载体。对原核表达产物的可溶性分析结果表明, 表达的E蛋白主要以包涵体的形式存在于菌体裂解后的沉淀中。本研究中E蛋白表达量始终偏低, 诱导表达过程中,相同条件下,转入空质粒载体细菌的生长速度,明显高于转入E基因重组质粒载体细菌的生长速度,这可能是E蛋白对细菌细胞有一定毒性有关,今后仍需要优化诱导条件和插入片段的长度等,来提高E蛋白表达量。本实验用原核表达系统,在国内外首次成功表达了具有良好反应活性的 DIMUV E蛋白,这为 DTMUV的诊断、抗原性分析及功能研究提供了基础参考文獻 l Yan P, Zhao Y, Zhang x, et al. An infectious disease of ducks caused by a newly emerged Tembusu virus strain in mainland China]. virology, 2011, 417(1): 1-8 2]LiY, YeJ, Cao S, et al. Immunization with pseudotype baculovirus expressing envelope protein of Japanese encephalitis virus elicits protective immunity in mice[J]. J Gene Med, 2009, 11(2): 150-159 B]Li P, Zheng Q S, Wang Q, et al.Immune responses of recombinant adenoviruses expressing immunodominant epitopes against Japanese encephalitis virus[]. Vaccine, 2008, 26(46): 5802-5807 [4]吴玉水.基因工程重组乙型脑炎病毒E蛋白作为候选疫苗和诊断抗原的实验研究D]第四军医大学博士学位论文 [5]Modis Y, Ogata S, Clements D, et al. Variable surface epitopes in the crystal structure of dengue virus type 3 envelope lycoproteinp].J Virol, 2005, 79(2): 1223-31 6 NybakkenG E, Nelson C A, Chen B R, et al. Crystal structure of the West Nile virus envelope glycoprotein].J Virol, 2006,80023):11467-11474. 7 Stiasny K, Kossl C, Lepault J, et al. Characterization of a Structural Intermediate of Flavivirus Membrane Fusion] PLoS Pathog, 2007, 3(2): 20 8] Sambrook J, FritschE F, Maniatis,.分子克隆实验指南[M]2版,金冬雁,黎孟枫,译,北京:科学出版社,1989, 49-56,845-848,876-887 [9]Wang JW, FuS H, Wang H Y, et al. Isolation and identification of Japanese encephalitis virus in Liaoning province[J]. A 华实验和临床病毒学杂志,2006,20(1):61-65 [10 Verma SK, Gupta N, Pattnaik P, et al. Antibodies against refolded recombinant envelope protein( domain Ill) of encephali is virus inhibit the DTMUV infection to porcine stable idney cells]. Protein Pept Lett, [吕晓丽,崔保安,陈红英,等.复合RT-PCR检测猪乙脑病毒和猪流感病毒方法的建立门.华南农业大学学报, 2008,29(4):79-82 [12] Verma SK, Kumar S, Gupta N, et al. Bacterially expressed recomb inant envelope protein domain Ill of Japanese encephali is virus(rDTMUV D Ill)elicits Th I type of immune response in BALB/c mice[J]. Vaccine, 2009, 27(49): 6905

的主要成分，它可激发中和抗体和保护性免疫，一般认为它是病毒受体的结合蛋白，并介导膜融合和细胞穿入。本研究利用 PCR 技术扩增出了 DTMUV 完整 E 蛋白基因片段[11]，含有形成高级结构所需的所有元件。为了分析原核表达的 E 蛋白的生物学特性，建立安全、简便和经济的制备 DTMUV 诊断抗原的方法，笔者构建了 DTMUV-E 表达载体，并在大肠杆菌中表达。由于大肠杆菌表达菌株 BL21 （DE3 pLysS+）的转化效率相对较低，所以按 pET 系列载体克隆操作说明的方法，先把目的基因和载体的连接产物克隆入大肠杆菌 JM109 中，筛选出重组质粒后，再把重组质粒转化表达菌株 BL21 （DE3），最后成功地在大肠杆菌中表达了 E 蛋白。 DTMUV 的 E 蛋白在病毒与敏感细胞结合过程中起着重要的作用，DTMUV 敏感细胞表面有病毒的相应受体，但其结构和功能尚未明确。我们用原核表达系统表达 E 蛋白，在多次尝试不同表达载体与宿主菌之后，成功的构建了 E 蛋白的原核表达载体。对原核表达产物的可溶性分析结果表明，表达的 E 蛋白主要以包涵体的形式存在于菌体裂解后的沉淀中。本研究中 E 蛋白表达量始终偏低，诱导表达过程中，相同条件下，转入空质粒载体细菌的生长速度，明显高于转入 E 基因重组质粒载体细菌的生长速度，这可能是 E 蛋白对细菌细胞有一定毒性有关，今后仍需要优化诱导条件和插入片段的长度等，来提高 E 蛋白表达量。本实验用原核表达系统，在国内外首次成功表达了具有良好反应活性的 DTMUV E 蛋白，这为 DTMUV 的诊断、抗原性分析及功能研究提供了基础。参考文献 [1] Yan P, Zhao Y, Zhang X, et al. An infectious disease of ducks caused by a newly emerged Tembusu virus strain in mainland China[J]. Virology, 2011, 417(1): 1-8. [2] Li Y, Ye J, Cao S, et al. Immunization with pseudotype baculovirus expressing envelope protein of Japanese encephalitis virus elicits protective immunity in mice[J].J Gene Med, 2009,11(2):150-159. [3] Li P, Zheng Q S, Wang Q, et al.Immune responses of recombinant adenoviruses expressing immunodominant epitopes against Japanese encephalitis virus[J].Vaccine, 2008, 26(46): 5802-5807. [4] 吴玉水. 基因工程重组乙型脑炎病毒E蛋白作为候选疫苗和诊断抗原的实验研究[D]. 第四军医大学博士学位论文, 2003. [5] Modis Y, Ogata S, Clements D, et al.Variable surface epitopes in the crystal structure of dengue virus type 3 envelope glycoprotein[J]. J Virol, 2005, 79(2): 1223-31. [6]Nybakken G E, Nelson C A, Chen B R, et al. Crystal structure of the West Nile virus envelope glycoprotein[J]. J Virol, 2006, 80(23): 11467-11474. [7] Stiasny K, Kossl C, Lepault J, et al. Characterization of a Structural Intermediate of Flavivirus Membrane Fusion[J]. PLoS Pathog, 2007, 3(2): 20 [8] Sambrook J, Fritsch E F, Maniatis, T. 分子克隆实验指南[M]. 2版, 金冬雁, 黎孟枫, 译, 北京: 科学出版社, 1989, 49-56, 845-848, 876-887. [9]Wang J W, Fu S H, Wang H Y, et al. Isolation and identification of Japanese encephalitis virus in Liaoning province[J].中华实验和临床病毒学杂志, 2006, 20(1): 61-65. [10]Verma S K, Gupta N, Pattnaik P, et al. Antibodies against refolded recombinant envelope protein(domain III) of Japanese encephalit is virus inhibit the DTMUV infection to porcine stablek idney cells[J]. Protein Pept Lett, 2009,16(11):1334-1341. [11]吕晓丽, 崔保安, 陈红英, 等. 复合RT- PCR检测猪乙脑病毒和猪流感病毒方法的建立[J]. 华南农业大学学报, 2008, 29(4): 79-82. [12] Verma S K, Kumar S, Gupta N, et al. Bacterially expressed recomb inant envelope protein domain III of Japanese encephalit is virus(rDTMUV D III)elicits Th 1 type of immune response in BALB/c mice[J].Vaccine, 2009, 27(49)：6905